Изделия из резины и пластмасс стерилизуют в режиме – Тесты по хирургии. Профилактика хирургической инфекции

Тесты по хирургии. Профилактика хирургической инфекции

Джо́зеф Ли́стер — крупнейший английский хирург и учёный, создатель хирургической антисептики

Итоговая государственная аттестация (ИГА)
Дисциплина/Тема: Хирургия/Профилактика хирургической инфекции

№ 2
* 1 -один правильный ответ
Антисептика — это комплекс мероприятий
1) по борьбе с инфекцией в ране
2) по профилактике попадания инфекции в рану
3) по дезинфекции инструментов
4) по стерилизации инструментов
! 1
№ 3
* 1 -один правильный ответ
В течение 1 минуты обрабатывают руки перед операцией в растворе
1) гибитана
2) первомура (С-4)
3) нашатырного спирта
4) йодоната
! 2
№ 4
* 1 -один правильный ответ
Основоположник асептики
1) Бергман
2) Листер

3) Дьяконов
4) Пастер
! 1
№ 5
* 1 -один правильный ответ
Основоположник антисептики
1) Пирогов
2) Пастер
3) Листер
4)Ландштейнер
! 3
№ 6
* 1 -один правильный ответ
Дезинфекция — это
1) комплекс мероприятий, предупреждающих попадание микробов в рану
2) уничтожение всех микроорганизмов, в том числе и спорообразующих
3) уничтожение патогенных микробов
4) механическое удаление микроорганизмов с поверхности изделий медицинского назначения
! 3
№ 7
* 1 -один правильный ответ
Стерилизация — это
1) комплекс мероприятий, предупреждающих попадание микробов в рану
2) уничтожение всех микроорганизмов, в том числе и спорообразующих
3) уничтожение патогенных микробов
4) механическое удаление микроорганизмов с поверхности изделий медицинского назначения
! 2
№ 8
* 1 -один правильный ответ
С целью дезинфекции инструментов не применяют
1) автоклавирование
2) кипячение
3) помещение в пароформалиновую камеру
4) помещение в сухожаровой шкаф
! 3
№ 9
* 1 -один правильный ответ
К физическому методу стерилизации относят
1) автоклавирование
2) погружение в 70% раствор этилового спирта
3) погружение в 6% раствор перекиси водорода
4) воздействие парами формалина
! 1
№ 10
* 1 -один правильный ответ
Операционное белье стерилизуют в режиме
1) 180* — 60 мин
2) 120* — 1,1 атм. — 45 мин
3) 160* -180 мин
4) 132* — 2,0 атм. — 20 мин
! 4
№ 11
* 1 -один правильный ответ
Изделия из резины и пластмасс стерилизуют в режиме
1) 180* — 60 мин
2) 120* — 1,1 атм. — 45 мин
3) 160* — 180 мин
4) 132* — 2,0 атм. — 20 мин
! 2
№ 12
* 1 -один правильный ответ
Время химической стерилизации инструментов в 6% растворе перекиси водорода при комнатной температуре
1) 1 час
2) 3 часа
3) 6 часов
4) 40 мин
! 3
№ 13
* 1 -один правильный ответ
Основной режим сухожаровой стерилизации инструментария
1) 120* — 40 мин
2) 180* — 3 часа
3) 200* — 40 мин
4) 180* — 1 час
! 4
№ 14
* 1 -один правильный ответ
Проба на качество предстерилизационной обработки инструментов
1) бензидиновая
2) азопирамовая
3) бензойная
4) никотинамидовая
! 2
№ 15
* 1 -один правильный ответ
Инструментарий для эндохирургии стерилизуют в
1) в автоклаве
2) в сухожаровом шкафу
3) холодным способом
4) кипячением
! 3
№ 16
* 1 -один правильный ответ
Антисептик, применяемый для обработки операционного поля
1) хлоргексидина биглюконат
2) перекись водорода
3) фурациллин
4) нашатырный спирт
! 1
№ 17
* 1 -один правильный ответ
Оптимальный по времени и эффективности способ предоперационной обработки рук
1) по Спасокукоцкому-Кочергину
2) по Альфельду
3) по Фюрбрингеру
4) первомуром
! 4
№ 18
* 1 -один правильный ответ
Применение лазера в хирургии относится к антисептике
1) механической
2) физической
3) биологической
4) химической
! 2
№ 19
* 1 -один правильный ответ
Биологическая антисептика предусматривает применение
1) гипериммунной плазмы
2) первичной хирургической обработки ран
3) дренирования ран
4) раствора перекиси водорода
! 1
№ 20
* 1 -один правильный ответ
Наркозно-дыхательная аппаратура дезинфицируется раствором
1) 96% этилового спирта — 10 мин
2) 10% формальдегида — 10 мин
3) 1% хлорамина — 60 мин
4) 3% перекиси водорода — 60 мин
! 4
№ 21
* 1 -один правильный ответ
Для контроля качества предоперационной обработки рук используют
1) термоиндикаторы
2) бактериологический контроль
3) фенолфталеиновую пробу
4) амидопириновую пробу
! 2
№ 22
* 1 -один правильный ответ
При видовой укладке бикса, в него закладывают
1) необходимое для определенной операции
2) один вид материалов
3) необходимое в течение рабочего дня перевязочной
4) необходимое для подготовки операционной сестры к операции
! 2
№ 23
* 1 -один правильный ответ
Срок хранения закрытого стерильного бикса без фильтра не более
1) 3 суток
2) 1 суток
3) 20 суток
4) 6 часов
! 1
№ 24
* 1 -один правильный ответ
Стерильность открытого бикса сохраняется
1) 6 часов
2) 12 часов
3) 10часов
4) 24 часа
! 1
№ 25
* 1 -один правильный ответ
Генеральная уборка в операционном блоке проводится 1 раз в
1) месяц
2) неделю
3) 10 дней
4) 2 недели
! 2
№ 26
* 1 -один правильный ответ
Нарушение асептики может привести к осложнению
1) воздушной эмболии
2) аллергической реакции
3) абсцессу
4) липодистрофии
! 3
№ 27
* 1 -один правильный ответ

Одноразовую систему после инфузионной терапии необходимо
1) выбросить сразу
2) замочить в дез. растворе
3) сдать старшей медсестре
4) промыть проточной водой
! 2
№ 28
* 1 -один правильный ответ
Раствор для дезинфекции оснащения после определения группы крови
1) 0,5 раствор осветленной хлорной извести
2) 1% раствор хлорамина
3) 3% раствор хлорамина
4) 0,5 % раствор СМС
! 3
№ 29
* 1 -один правильный ответ
Для мытья рук по Спасокукоцкому-Кочергину используют раствор нашатырного спирта
1) 0,5%
2) 1%
3) 1,5%
4) 2%
! 1
№ 30
* 1 -один правильный ответ
Уборку операционного блока в течение дня проводят
1) 1 раз
2) 2 раза
3) ни разу
4) по требованию, но не реже 2-х раз
! 4
№ 31
* 1 -один правильный ответ
Все участники операции должны быть
1) в стерильной одежде
2) не имеет значения
3) в чистой одежде
4) в стерильной одежде и маске
! 4
№ 32
* 1 -один правильный ответ
Количество хлорной извести для приготовления 10% раствора
1) 100 г хлорной извести на 9,9 л воды
2) 1 кг хлорной извести на 9 л воды
3) 1 кг хлорной извести на 5 л воды
4) 100 г хлорной извести на 10 л воды
! 2
№ 33
* 1 -один правильный ответ
Текущая уборка в операционной проводится
1) 1 раз в день
2) в течение всего рабочего дня
3) перед операцией
4) в конце рабочего дня
! 2
№ 34
* 1 -один правильный ответ
После обработки рук дез. раствором они становятся
1) стерильными
2) дезинфицированными
3) чистыми
4) подготовленными к операции
! 2
№ 35
* 1 -один правильный ответ
Для подготовки рук операционной бригады не применяют
1) 0,5% раствор нашатырного спирта
2) первомур
3) 3% раствор хлорамина
4) 0,5% спиртового раствор хлоргексидина
! 3
№ 36
* 1 -один правильный ответ
Экзогенный путь проникновения инфекции в рану из
1) разрушенных кариесом зубов
2) внешней среды
3) воспаленных миндалин
4) пораженных почек
! 2
№ 37
* 1 -один правильный ответ
Эндогенный путь проникновения инфекции в рану
1) воздушно-капельный
2) контактный
3) воздушно-пылевой
4) лимфогенный
! 4
№ 38
* 1 -один правильный ответ
В операционном блоке посевы воздуха производят
1) 4 раза в месяц
2) 1 раз в месяц
3) 1 раз в 3 месяца
4) 1 раз в 2 месяца
! 2
№ 39
* 1 -один правильный ответ
Стерилизация эндоскопической аппаратуры в параформалиновой камере производится в течение
1) 6-12 час
2) 2-6 час
3) 24-48 час
4) 12-20 час
! 3
№ 40
* 1 -один правильный ответ
В сухожаровом шкафу стерилизуют мед. изделия из
1) резины
2) текстиля
3) полимеров
4) металла
! 4
№ 41
* 1 -один правильный ответ
Продолжительность обработки рук 05% раствором аммиака в каждом из 2-х тазов по способу Спасокукоцкого-Кочергина
1) 2 мин
2) 3 мин
3) 4 мин
4) 5 мин
! 2
№ 42
* 1 -один правильный ответ
При предстерилизационной обработке инструменты погружают в моющий раствор на
1) 5 мин
2) 15 мин
3) 45 мин
4) 60 мин
! 2
№ 43
* 1 -один правильный ответ
Продолжительность дезинфекции кипячением
1) 15 мин
2) 30 мин
3) 45 мин
4) 60 мин
! 2
№ 44
* 1 -один правильный ответ
Время обработки рук в растворе С-4 (первомур1)
1) 3 мин
2) 1 мин
3) 5 мин
4) 10 мин
! 2
№ 45
* 1 -один правильный ответ
Первичная хирургическая обработка ран относится к антисептике
1) химической
2) физической
3) биологической
4) механической
! 4

kbmk.info

Хирургия. Профилактика хирургической внутрибольничной инфекции, инфекционная безопасность в работе медицинской сестры:

1. Асептика — это комплекс мероприятий:

а) по борьбе с инфекцией в ране

б)+ по профилактике попадания инфекции в рану

в) по дезинфекции инструментов

г) по стерилизации инструментов

2. Антисептика — это комплекс мероприятий:

а)+ по борьбе с инфекцией в ране

б) по профилактике попадания инфекции в рану

в) по дезинфекции инструментов

г) по стерилизации инструментов

3. В течение 1 минуты обрабатывают руки перед операцией в растворе:

а) гибитана

б)+ первомура (С-4)

в) нашатырного спирта

г) йодоната

4. Основоположник асептики:

а)+ Бергман

б) Листер

в) Дьяконов

г) Пастер

5. Основоположник антисептики:

а) Пирогов

б) Пастер

в)+ Листер

г) Ландштейнер

6. Дезинфекция — это:

а) комплекс мероприятий, предупреждающих попадание микробов в рану

б) уничтожение всех микроорганизмов, в том числе и спорообразующих

в)+ уничтожение патогенных микробов

г) механическое удаление микроорганизмов с поверхности изделий медицинского назначения

7. Стерилизация — это:

а) комплекс мероприятий, предупреждающих попадание микробов в рану

б)+ уничтожение всех микроорганизмов, в том числе и спорообразующих

в) уничтожение патогенных микробов

г) механическое удаление микроорганизмов с поверхности изделий медицинского назначения

8. Применение перекиси водорода относится к методу антисептики:

а) физическому

б)+ химическому

в) механическому

г) биологическому

9. К физическому методу стерилизации относят:

а)+ автоклавирование

б) погружение в 70% раствор этилового спирта

в) погружение в 6% раствор перекиси водорода

г) воздействие парами формалина

10. Операционное белье стерилизуют в режиме:

а) 180°С — 60 мин.

б) 120°С. — 1,1 атм. — 45 мин.

в) 160°С — 180 мин.

г)+ 132°С — 2,0 атм. — 20 мин.

11. Изделия из резины и пластмасс стерилизуют в режиме:

а) 180°С — 60 мин.

б)+ 120°С — 1,1 атм. — 45 мин.

в) 160°С — 180 мин.

г) 132°С — 2,0 атм. — 20 мин.

12. Время химической стерилизации инструментов в 6% растворе перекиси водорода при комнатной температуре:

а) 1 час

б) 3 часа

в)+ 6 часов

г) 40 мин.

13. Основной режим сухожаровой стерилизации инструментария:

а) 120° С — 40 мин.

б) 180° С — 3 часа

в) 200° С — 40 мин.

г) +180° С — 1 час

14. Проба на качество предстерилизационной обработки инструментов:

а) формалиновая

б)+ азопирамовая

в) бензойная

г) никотинамидовая

15. Инструментарий для эндохирургии стерилизуют:

а) в автоклаве

б) в сухожаровом шкафу

в)+ холодным способом

г) кипячением

16. Антисептик, применяемый для обработки операционного поля:

а)+ хлоргексидина биглюконат

б) перекись водорода

в) фурацилин

г) нашатырный спирт

17. Оптимальный по времени и эффективности способ предоперационной обработки рук:

а) по Спасокукоцкому-Кочергину

б) по Альфельду

в) по Фюрбрингеру

г)+ первомуром

18. Применение лазера в хирургии относится к антисептике:

а) механической

б)+ физической

в) биологической

г) химической

19. Биологическая антисептика предусматривает применение:

а)+ гипериммунной плазмы

б) первичной хирургической обработки ран

в) дренирования ран

г) раствора перекиси водорода

20. Наркозно-дыхательная аппаратура дезинфицируется раствором:

а) 96% этилового спирта — 10 мин.

б) 10% формальдегида — 10 мин.

в) 1% хлорамина — 60 мин.

г)+ 3% перекиси водорода — 60 мин.

21. Для контроля качества предоперационной обработки рук используют:

а) термоиндикаторы

б)+ бактериологический контроль

в) фенолфталеиновую пробу

г) амидопириновую пробу

22. При видовой укладке бикса в него закладывают:

а) все необходимое для определенной операции

б)+ только один вид материалов

в) необходимое в течение рабочего дня перевязочной

г) необходимое для подготовки операционной сестры к операции

23. Срок хранения закрытого стерильного бикса без фильтра не более:

а)+ 3 суток

б) 1 суток

в) 20 суток

г) 6 часов

24. Стерильность открытого бикса сохраняется:

а)+ 6 часов

б) 12 часов

в) 10 часов

г) 24 часа

25. Генеральная уборка в операционном блоке проводится 1 раз в:

а) месяц

б)+ неделю

в) 10 дней

г) 2 недели

26. Нарушение асептики выполнения инъекции может привести к:

а) воздушной эмболии

б) аллергической реакции

в)+ абсцессу

г) липодистрофии

27. Одноразовую систему после инфузионной терапии необходимо:

а) выбросить сразу

б)+ разрезать, замочить в дезрастворе

в) сдать старшей медсестре

г) промыть проточной водой

28. Раствор для дезинфекции оснащения после определения группы крови:

а) 0,5% рабочий раствор хлорной извести

б) 1% раствор хлорамина

в)+ 3% раствор хлорамина

г) 0,5 % раствор СМС

29. Для мытья рук по Спасокукоцкому-Кочергину используют раствор нашатырного спирта:

а)+ 0,5%

б) 1%

в) 1,5%

г) 2%

30. Уборку операционного блока в течение дня проводят:

а) 1 раз

б) 2 раза

в) ни разу

г)+ по требованию, но не реже 2 раз

31. Все участники операции должны быть:

а) в стерильной одежде

б) не имеет значения

в) в чистой одежде

г)+ в стерильной одежде и маске

32. Количество хлорной извести для приготовления 10% раствора:

а) 100 г хлорной извести на 9,9 л воды

б)+ 1 кг хлорной извести на 9 л воды

в) 1 кг хлорной извести на 5 л воды

г) 100 г хлорной извести на 10 л воды

33. Текущая уборка в операционной проводится:

а) 1 раз в день

б)+ в течение всего рабочего дня

в) перед операцией

г) в конце рабочего дня

34. Руки после их хирургической дезинфекции становятся:

а) стерильными

б)+ дезинфицированными

в) чистыми

г) подготовленными к операции

35. Для подготовки рук операционной бригады применяют:

а)+ 2,4% раствор первомура

б) 1% раствор хлорамина

в) 3% спиртовой раствор перекиси водорода

г) 3% раствор хлорамина

36. Экзогенный путь проникновения инфекции в рану из:

а) разрушенных кариесом зубов

б)+ внешней среды

в) воспаленных миндалин

г) пораженных почек

37. Эндогенный путь проникновения инфекции в рану:

а) воздушно-капельный

б) контактный

в) воздушно-пылевой

г)+ лимфогенный

38. В операционном блоке посевы воздуха производят:

а) 4 раза в месяц

б)+ 1 раз в месяц

в) 1 раз в 3 месяца

г) 1 раз в 2 месяца

39. Режим стерилизации эндоскопической аппаратуры:

а) в 3% растворе хлорамина 30 мин.

б)+ в 6% растворе перекиси водорода 360 мин.

в) в 10% растворе перекиси водорода 60 мин.

г) в 70 спирте 10 мин.

40. Продолжительность дезинфекции кипячением в дистиллированной воде:

а) 15 минут

б) 45 минут

в) 60 минут

г)+ 30 минут

41. Продолжительность обработки рук 05% раствором аммиака в каждом из 2 тазов по способу Спасокукоцкого-Кочергина:

а) 2 мин.

б)+ 3 мин.

в) 4 мин.

г) 5 мин.

42. При предстерилизационной обработке инструменты погружают в моющий раствор на:

а) 5 мин.

б)+ 15 мин.

в) 45 мин.

г) 60 мин.

studfiles.net

Стерилизация резиновых и пластмассовых инструментов.

Основной метод стерилизации резиновых изделий – автоклавирование. При многократной стерилизации резина теряет свои эластические свойства, трескается, что признано некоторым недостатком метода. Пластмассовые изделия разового использования, а также катетеры и зонды подвергают лучевой заводской стерилизации. Особо следует сказать о стерилизации перчаток. В последнее время наиболее часто используют одноразовые перчатки, подвергшиеся лучевой заводской стерилизации. При многократном использовании основным методом стерилизации становится автоклавирование в щадящем режиме: после предстерилизационной обработки перчатки высушивают, пересыпают тальком (предупреждает слипание), заворачивают в марлю, укладывают в бикс. Автоклавируют при 1,1 атм. в течение 30 – 40 мин, при 1,5 атм. – 15 – 20 мин. После надевания стерильных перчаток обычно их обрабатывают марлевым шариком со спиртом для снятия с поверхности талька или других веществ, препятствовавших слипанию резины. В экстренных случаях для стерилизации перчаток возможен следующий приём: хирург надевает перчатки и в течение 5 мин обрабатывает их тампоном, смоченным 96% этиловым спиртом.

Стерилизация оптических инструментов.

Основной метод стерилизации оптических инструментов, требующих щадящей обработки с исключением нагревания, — газовая стерилизация. Этим способом обрабатывают все инструменты для проведения лапароскопических и торакоскопических вмешательств, что связано со сложным их устройством. При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, колоноскопов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков. Следует особо отметить, что наилучшим способом профилактики контактной инфекции признано использование одноразового инструментария, подвергшегося лучевой заводской стерилизации!

Стерилизация перевязочного материала и белья.

Виды перевязочного материала и операционного белья.

К перевязочному материалу относят марлевые шарики, тампоны, салфетки, бинты, турунды, ватно-марлевые тампоны. Перевязочный материал обычно готовят непосредственно перед стерилизацией, используя специальные приёмы для предотвращения осыпания отдельных нитей марли. Для удобства подсчёта шарики укладывают по 50 – 100 штук в марлевые салфетки, салфетки и тампоны связывают по 10 штук. Перевязочный материал повторно не используют, после применения его уничтожают. К операционному белью относят хирургические халаты, простыни, полотенца, подкладные. Материалом для их изготовления служат хлопчатобумажные ткани. Операционное бельё многократного применения после использования проходит стирку, причём отдельно от других видов белья.

Стерилизация.

Перевязочный материал и бельё стерилизуют автоклавированием при стандартных режимах. Перед стерилизацией перевязочный материал и бельё укладывают в биксы. Существует три основных вида укладки бикса: универсальная, целенаправленная и видовая укладки.

Универсальная укладка.

Обычно используют при работе в перевязочной и при малых операциях. Бикс условно разделяют на секторы, каждый из них заполняют определённым видом перевязочного материала или белья: в один сектор помещают салфетки, в другой – шарики, в третий – тампоны и т. д.

Целенаправленная укладка.

Предназначена для выполнения типичных манипуляций, процедур и малых операций. Например, укладка для трахеостомии, катетеризации подключичной вены, перидуральной анестезии и пр. в бикс укладывают все инструменты, перевязочный материал и бельё, необходимые для осуществления процедур.

Видовая укладка.

Обычно используют в операционных, где необходимо большое количество стерильного материала. При этом в один бикс, например, укладывают хирургические халаты, в другой – простыни, в третий – салфетки и т. д. В небольшом количестве используют перевязочный материал в упаковках, прошедших лучевую стерилизацию. Существуют и специальные наборы операционного белья одноразового использования (халаты и простыни), изготовленные из синтетических тканей, также подвергшихся лучевой стерилизации.

Обработка рук хирурга.

Обработка (мытьё) рук хирурга – очень важная процедура. Существуют определённые правила мытья рук. Классические методы обработки рук Спасокукоцкого – Кочергина, Альфледа, Фюрбрингера и другие имеют лишь исторический интерес, их в настоящее время не применяют.

studfiles.net

Стерилизация изделий из резины и полимерных материалов — Студопедия.Нет

Стерилизация изделий из резины, хирургических перча­ток, мочевых катетеров и т.д. производится согласно ОСТ 42 21-2—85 чаще всего паром под давлением (в II режиме стерилизации). Резиновые изделия, прошедшие дезинфекцию и пред стерилизационную очистку, помещают в стерилизационные коробки различной модификации, тщательно следя за тем чтобы не было перегибов, т.к. после стерилизации они не расправляются. В условиях поликлиники может пpимeнятьcя стерилизация химическим методом (использование 6% раствора перекиси водорода или 1% раствора дизоксона-1). В промышленных условиях применяются газовый и радиацион­ный методы стерилизации.

Стерилизация цистоскопов, лапароскопов, бронхоскопов,

Торакоскопов

После использования рабочую часть аппарата, сопри­касающуюся с тканями, протирают 2—3 раза салфеткой, смо­ченной 3% раствором перекиси водорода, после чего ее 2—3 раза дополнительно обрабатывают спиртовым раствором хлоргексидина. Окуляр лапароскопа, т.к. он не соприкасается с раной, протирают тампоном, смоченным спиртом, либо спир­товым раствором хлоргексидина.

Цистоскопы в настоящее время стерилизуют в парафор-малиновом стерилизаторе (сухими парами формалина), газо­вым методом или с использованием химических препаратов (6% раствор перекиси водорода, первомур, дезоксон-1) Лапароскопы, бронхоскопы и торакоскопы следует стерили­зовать окисью этилена в газовых стерилизаторах.

Стерилизация свстоволоконной эндоскопической аппа­ратуры (фиброгастродуоденоскопы, фиброколоноскопы, фиброхолсдохоскопы, фибровульвоскопы, фиброинтестиноскопы, фиброхоланшоскопы и др.)

Сложность проведения дезинфекции и стерилизации этих аппаратов заключается в том, что световолоконная часть очень неустойчива к тем методам дезинфекции и стерилизации, которые применяются в настоящее время в хирургии.

Сразу после использования рабочую часть (вводимую внутрь организма) обрабатывают снаружи тампонами, смо­ченными 0,5% спиртовым раствором хлоргексидина. Рабочие каналы аппаратов промывают моющим раствором, содержа­щим CMC и 3° о перекись водорода, после чего также обраба­тывают раствором дезинфектанта (спиртовый раствор хлор­гексидина, первомур и т.д.).

Стерилизацию эндоскопической аппаратуры подобного типа производят газовым методом только в специальных газовых стерилизато­рах окисью этилена. Рекомендуемая в настоящее времяСЭСстерилизация этой аппаратуры в парах формалина фактичес­ки неприменима, т.к. световолоконная часть аппаратуры быс­тро выходит из строя (изображение становится мутным и т.д.).

Стерилизация ректоскопов с волоконнымсветоводом

После использования тубус ректоскопа помещают на 30 мин в 10% раствор катамина для дезинфекции, после чего проводят его предстерилизационную очистку мытьем в 0,5% растворе CMC с добавлением перекиси водорода. Стерилиза­ция ректоскопов с волоконнымсветоводом производится в газовых стерилизаторах окисью этилена. Лупа, ручка, нагне­татель воздуха после использования дезинфицируются двух­кратным протиранием тампоном, смоченным 3% раствором перекиси водорода с добавлением 0,5% раствора CMC «Лотос». Дезинфекция обтуратора, ватодержателя, коагулятора, элек­тропетель и биопсийных щипцов производится погружением в 10% раствор катамина с последующей предстерилизационной очисткой ручным способом в растворе CMC «Биолот» или «Био-С» и 3% перекиси водорода. Последующая стерили­зация может осуществляться газовым, химическим методами стерилизации

 

 

3.Способы стерилизации

а). Подготовка рук хирурга

Хирург и операционная сестра должны постоянно сле­дить за состоянием кожи рук (профилактика микротравма­тизма, стрижка ногтей, частое мытье рук при их загрязнении и т.д.). Цель обработки рук перед операцией заключается в освобождении их от микроорганизмов, находящихся как на поверхности кожных покровов, так и в их толще (потовые, сальные железы, волосяные фолликулы). Методы обработки рук хирурга слагаются из 3-х составляющих:                                                                     1.механической очистки;             

2.обработки антисептическими растворами;                                                       

3.дублении кожи или покрытии ее тонкой пленкой.                                                         

При всех методах мытья рук обязательно надевание резиновых перчаток

Обработка рук про­изводится в два этапа:

1. Механическая очистка кожи путем мытья рук под про­точной водой с использованием CMC или мыла. При этом могут применяться щетки, резиновые губки и т.д.

2. Непосредственная обработка рук растворами хими­ческих антисептических веществ. В зависимости от вида при меняемого химического препарата существует несколько раз­личных методик обработки рук.

Очень эффективным и быстрым способом является обработка йодофором (йодопирон-поливинилпиролидон, повидон-йодин-бетадин) и гексахлорофеномв мылоподобном растворе (шампунь) в течение 3-5 мин, причем одновременно достигаются и очищение, и дезинфекция кожи рук.

В случае крайней необходимости быструю дезинфекцию рук производят 70% спиртом, спиртовым раствором гибитана, надмуравьиной кислотой (первомур-рецепт С-4). Длительность дезинфекции — 1 мин. В. этих условиях можно прибегать к предварительной обработке рук мылом

 

Обработка рук 2,4% раствором первомура (рецептура С-4)

1. Руки моют теплой проточной водой с мылом в тече­ние 1 мин.

2. Тщательно вытирают сухим полотенцем или салфет­кой.

3. Обрабатывают кожу рук раствором первомура в тече­ние 1 мин.

4.Вытирают руки стерильными салфетками.

             Обработка рукдегмицидом

1. Перед обработкой дегмицидом мытье рук с мылом не обязательно, т.к. раствор дегмицида обладает моющими сред­ствами.

2. Обработка производится путем протирания рук двумя поролоновыми губками, смоченными 1 % раствором дегмици­да (по 3 мин каждой губкой).

3. Образовавшуюся пену и остатки раствора удаляют стерильными салфетками

Обработка рук гибитаном (0,5% спиртовым раствором  хлоргексидина биглюконата).

1. Руки моют в теплой проточной воде с мылом.

2. В течение 3 мин руки протирают салфеткой, смочен­ной 0,5% спиртовым раствором хлоргексидина.

3. Вытирают руки стерильными салфетками

Обработка рук церигелем

1. Руки моют с мылом теплой проточной водой.

2. Тщательно высушивают сухим чистым полотенцем.

3. На сухую кожу рук наносят 3-5 мл церигеля и в тече­ние 8-10 с аккуратно распределяют раствор равномерным сло­ем по всей поверхности рук.

4. Руки сушат под потоком воздуха от вентилятора в течение 2-3 мин до образования тонкой прозрачной пленки, не смыкая пальцев

5. После операции пленку снимают марлевым шариком со спиртом.

При использовании церигеля применение перчаток не обязательно.

При всех остальных методиках следует надевать перчат­ки, т.к. кожа рук не стерилизуется

 Используется церигель в экстренных случаях для ускоренной обработки рук., также в условиях поликлиники при выполнении амбулаторных операций.

В наиболее экстренных случаях обрабатывают руки 1% р-ром йодоната или бриллиантового зеленого, который после операции смывается 3% р-ром перекиси водорода.

Разработана методика обработки рук с применением ультразвука (кавитации): руки моют с мылом и протирают сухим полотенцем. Затем опускают в ванну УЗ-аппарата (ап­парат Ультра-Эйс, Япония), заполненную 1% раствором гибитана. Время обработки 30 с. а)

 

б). Обработка операционного поля

Операционное поле — это участок поверхности тела, че­рез который осуществляется операционный доступ.

Операционное поле так же, как и руки хирурга, подвер­гается специальной обработке с целью предупреждения инфицирования раневой поверхности в ходе операции.

Могут использо­ваться различные химические антисептики: первомур, йодонат, йодопирон, катамин, 0,5 -1 %спиртовой раствор хлоргексидина (гибитан), 70% этиловый спирт, дезоксон-1, раствор бриллиантовой зелени и т.д. Зона операционного поля должна обрабатывать­ся широко, т.к. в процессе оперативного вмешательства воз­можно ее расширение (необходимость удлинения разреза, вы­полнение дополнительных кожных разрезов и пр.). С целью механической очистки кожи больной за 12 ч до операции [если позволяет состояние) должен принять общую ванну или вымыться под душем. Не более чем за 2-2,5 ч. до операции в зоне операционного поля сбривается волосяной пок­ров.

Наиболее широко распространена последовательность обработки операционного поля по принципу Гроссиха — Филончикова в 2 этапа:

1- смазывание кожи раствором антисептика до и после обкладывания операционного поля стерильным бельем;

2- смазывание кожи антисептиком перед наложением швов на кожу и после.

Хирурги, используя при обработке операционного поля принцип Гроссиха — Филончикова, часто применяют комби­нацию нескольких химических антисептиков (йодоформ и спирт, первомур и спирт и т.д.)

В последние годы для обработки операционного поля стали применять следующие антисептические препараты: 1% раствор дегмина которым обильно смачивают тампоны и дважды обрабатывают им кожу; 05% раствор хлоргексидина-гибитан (водно-спиртовой) которым обрабатывают кожу дважды в течение 3-х минут с интервалом в 2 мин.. Дополнительно кожу обрабатывают этим же р-ом перед зашиванием и после.

Рациональным заменителем спиртового раствора йода является йодонат — водный раствор комплекса поверхностноактивного вещества с йодом. Препарат содержит 45% йода. Для обработки операционного поля употребляют 1 % раствор для чего исходный йодонат разводят в 45 раза дистиллированной водой. Кожу без предварительного мытья дважды смазывают этим раствором перед операцией не менее 1 мин. Перед наложением швов на кожу ее обрабатывают еще раз.

Обработка 1% р-м йодопироном по той же методике, что и при использовании йодоната

 

studopedia.net

Сестринское дело в хирургии. Основы реаниматологии

ИНФЕКЦИОННАЯ БЕЗОПАСНОСТЬ В РАБОТЕ МЕДИЦИНСКОЙ СЕСТРЫ

1. Асептика — это комплекс мероприятий

а) по борьбе с инфекцией в ране

б) по профилактике попадания инфекции в рану

в) по дезинфекции инструментов

г) по стерилизации инструментов

2. Антисептика — это комплекс мероприятий

а) по борьбе с инфекцией в ране

б) по профилактике попадания инфекции в рану

в) по дезинфекции инструментов

г) по стерилизации инструментов

3. В течение 1 минуты обрабатывают руки перед операцией в растворе

а) гибитана

б) первомура (С-4)

в) нашатырного спирта

г) йодоната

4. Основоположник асептики

а) Бергман

б) Листер

в) Дьяконов

г) Пастер

5. Основоположник антисептики

а) Пирогов

б) Пастер

в) Листер

г) Ландштейнер

6. Дезинфекция — это

а) комплекс мероприятий, предупреждающих попадание микробов в рану

б) уничтожение всех микроорганизмов, в том числе и спорообразующих

в) уничтожение патогенных микробов

г) механическое удаление микроорганизмов с поверхности изделий медицинского назначения

7. Стерилизация — это

а) комплекс мероприятий, предупреждающих попадание микробов в рану

б) уничтожение всех микроорганизмов, в том числе и спорообразующих

в) уничтожение патогенных микробов

г) механическое удаление микроорганизмов с поверхности изделий медицинского назначения

8. Применение перекиси водорода относится к методу антисептики

а) физическому

б) химическому

в) механическому

г) биологическому

9. К физическому методу стерилизации относят

а) автоклавирование

б) погружение в 70% раствор этилового спирта

в) погружение в 6% раствор перекиси водорода

г) воздействие парами формалина

10. Операционное белье стерилизуют в режиме

а) 180°С — 60 мин.

б) 120°С. — 1,1 атм. — 45 мин.

в) 160°С — 180 мин.

г) 132°С — 2,0 атм. — 20 мин.

11. Изделия из резины и пластмасс стерилизуют в режиме

а) 180°С — 60 мин.

б) 120°С — 1,1 атм. — 45 мин.

в) 160°С — 180 мин.

г) 132°С — 2,0 атм. — 20 мин.

12. Время химической стерилизации инструментов в 6% растворе перекиси водорода при комнатной температуре

а) 1 час

б) 3 часа

в) 6 часов

г) 40 мин.

13. Основной режим сухожаровой стерилизации инструментария

а) 120°С — 40 мин.

б) 180°С — 3 часа

в) 200°С — 40 мин.

г) 180°С — 1 час

14. Проба на качество предстерилизационной обработки инструментов

а) формалиновая

б) азопирамовая

в) бензойная

г) никотинамидовая

15. Инструментарий для эндохирургии стерилизуют

а) в автоклаве

б) в сухожаровом шкафу

в) холодным способом

г) кипячением

16. Антисептик, применяемый для обработки операционного поля

а) хлоргексидина биглюконат

б) перекись водорода

в) фурацилин

г) нашатырный спирт

17. Оптимальный по времени и эффективности способ предоперационной обработки рук

а) по Спасокукоцкому-Кочергину

б) по Альфельду

в) по Фюрбрингеру

г) первомуром

18. Применение лазера в хирургии относится к антисептике

а) механической

б) физической

в) биологической

г) химической

19. Биологическая антисептика предусматривает применение

а) гипериммунной плазмы

б) первичной хирургической обработки ран

в) дренирования ран

г) раствора перекиси водорода

20. Наркозно-дыхательная аппаратура дезинфицируется раствором

а) 96% этилового спирта — 10 мин.

б) 10% формальдегида — 10 мин.

в) 1% хлорамина — 60 мин.

г) 3% перекиси водорода — 60 мин.

21. Для контроля качества предоперационной обработки рук используют

а) термоиндикаторы

б) бактериологический контроль

в) фенолфталеиновую пробу

г) амидопириновую пробу

22. При видовой укладке бикса в него закладывают

а) все необходимое для определенной операции

б) только один вид материалов

в) необходимое в течение рабочего дня перевязочной

г) необходимое для подготовки операционной сестры к операции

23. Срок хранения закрытого стерильного бикса без фильтра не более

а) 3 суток

б) 1 суток

в) 20 суток

г) 6 часов

24. Стерильность открытого бикса сохраняется

а) 6 часов

б) 12 часов

в) 10 часов

г) 24 часа

25. Генеральная уборка в операционном блоке проводится 1 раз в

а) месяц

б) неделю

в) 10 дней

г) 2 недели

26. Нарушение асептики выполнения инъекции может привести к

а) воздушной эмболии

б) аллергической реакции

в) абсцессу

г) липодистрофии

27. Одноразовую систему после инфузионной терапии необходимо

а) выбросить сразу

б) разрезать, замочить в дезрастворе

в) сдать старшей медсестре

г) промыть проточной водой

28. Раствор для дезинфекции оснащения после определения группы крови

а) 0,5% рабочий раствор хлорной извести

б) 1% раствор хлорамина

в) 3% раствор хлорамина

г) 0,5 % раствор СМС

29. Для мытья рук по Спасокукоцкому-Кочергину используют раствор нашатырного спирта

а) 0,5%

б) 1%

в) 1,5%

г) 2%

30. Уборку операционного блока в течение дня проводят

а) 1 раз

б) 2 раза

в) ни разу

г) по требованию, но не реже 2 раз

31. Все участники операции должны быть

а) в стерильной одежде

б) не имеет значения

в) в чистой одежде

г) в стерильной одежде и маске

32. Количество хлорной извести для приготовления 10% раствора

а) 100 г хлорной извести на 9,9 л воды

б) 1 кг хлорной извести на 9 л воды

в) 1 кг хлорной извести на 5 л воды

г) 100 г хлорной извести на 10 л воды

33. Текущая уборка в операционной проводится

а) 1 раз в день

б) в течение всего рабочего дня

в) перед операцией

г) в конце рабочего дня

34. Руки после их хирургической дезинфекции становятся

а) стерильными

б) дезинфицированными

в) чистыми

г) подготовленными к операции

35. Для подготовки рук операционной бригады применяют

а) 2,4% раствор первомура

б) 1% раствор хлорамина

в) 3% спиртовой раствор перекиси водорода

г) 3% раствор хлорамина

36. Экзогенный путь проникновения инфекции в рану из

а) разрушенных кариесом зубов

б) внешней среды

в) воспаленных миндалин

г) пораженных почек

37. Эндогенный путь проникновения инфекции в рану

а) воздушно-капельный

б) контактный

в) воздушно-пылевой

г) лимфогенный

38. В операционном блоке посевы воздуха производят

а) 4 раза в месяц

б) 1 раз в месяц

в) 1 раз в 3 месяца

г) 1 раз в 2 месяца

39. Режим стерилизации эндоскопической аппаратуры

а) в 3% растворе хлорамина 30 мин.

б) в 6% растворе перекиси водорода 360 мин.

в) в 10% растворе перекиси водорода 60 мин.

г) в 70спирте 10 мин.

40. Продолжительность дезинфекции кипячением в дистиллированной воде

а) 15 минут

б) 45 минут

в) 60 минут

г) 30 минут

41. Продолжительность обработки рук 05% раствором аммиака в каждом из 2 тазов по способу Спасокукоцкого-Кочергина

а) 2 мин.

б) 3 мин.

в) 4 мин.

г) 5 мин.

42. При предстерилизационной обработке инструменты погружают в моющий раствор на

а) 5 мин.

б) 15 мин.

в) 45 мин.

г) 60 мин.

studfiles.net

Виды, методы и режимы стерилизации (см. таблицу)

⇐ ПредыдущаяСтр 14 из 26Следующая ⇒

Виды стерилизации	Методы стерилизации	Действующий агент, режим
Физический	паровой     воздушный   гласперленовый   инфракрасный   радиационный	пар под избыточным давлением (120 °С, давление 1,1 атм. – 45 минут) (132 °С, давление 2,0 атм. – 20 минут)   сухой воздух (при 180 °С – 60 минут) (160°С – 150 минут)     нагретые стеклянные шарики при 190–240 °С   инфракрасное излучение при 200+3 °С   облучение ионизирующим излучением
химический	жидкостный     плазменный газовый	растворы химических соединений (альдегид-, кислород- содержащих и др.)   пары 20 % пероксида водорода окись этилена в смеси с углекислым газом, бромистым метилом и др.

Паровой метод стерилизации

Для проведения паровой стерилизации используют паровые стерилизаторы (автоклавы) (рис.69). Стерилизующим средством является водяной насыщенный пар под избыточным давлением.

Рис.69 Паровой стерилизатор

Паровым методом стерилизуют общие хирургические и специальные инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозионностойких металлов, стекла, шприцы с пометкой 200°С, хирургическое белье, перевязочный и шовный материал, изделия из резин (перчатки, трубки, катетеры, зонды и т.д.), латекса, отдельных видов пластмасс.

Режимы стерилизации:

1. 132ºС, 2 атм., 20 минут (основной режим, рекомендуется для изделий из коррозионно-стойкого металла, стекла, изделий из текстиля, резины).

2. 120ºС, 1,1 атм., 45 минут (щадящий режим, рекомендуется для изделий из резины, латекса и отдельных полимерных материалов).

В целях уменьшения неблагоприятного воздействия пара

резиновые перчатки, как и другие изделия из резин,

стерилизуют при температуре 120°С.

 

Виды упаковки и сроки сохранения стерильности:

При стерилизации паровым методом материал упаковывают в стерилизационные коробки с фильтром или без фильтра (рис.70), двойную мягкую упаковку из бязи, пергамент, крафт-бумагу (рис.71), бумагу влагопрочную (рис.72), бумагу высокопрочную, бумагу крепированную (рис.73).

Рис.71 Крафт-пакет для стерилизации

Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных в стерилизационной коробке без фильтра, в двойной мягкой упаковке, крафт-бумаге – 3 суток, в пергаменте, бумаге влагопрочной, бумаге высокопрочной, бумаге крепированной, стерилизационной коробке с фильтром – 20 суток. В современных упаковках и более 20 суток.

При открытой стерилизационной коробке любого образца стерильность материалов, изделий сохраняется до 24 часов.

Рис.70 Стерилизационные коробки с фильтром и без фильтра

Рис.73 Крепированная бумага для стерилизации

Рис.72 Пакеты влагопрочные для стерилизации

Сроки использования изделий контролируются проставляемыми на бирках стерилизационных коробок датами, временем стерилизации, датами и временем вскрытия (первые помечаются работниками ЦСО или автоклавной, вторые выполняются медицинскими сестрами отделений).

 

Для контроля паровой стерилизации применяют термовременные ленты фирмы «Винар» – ИС-132, ИС-120 (рис.74). Это современные тесты контроля стерилизации, представляющие собой бумажные полоски с нанесенными на одну сторону специальным индикаторным составом, который меняет цвет при заданном режиме стерилизации (температуре и времени) и подтверждает наличие пара в стерилизаторе.

Рис.74 Индикаторы стерильности ИС-120

Виды укладки биксов:

а) универсальная –в стерилизационную коробку укладывают материал для накрытия «стерильного стола»;

б) целевая укладка –в стерилизационную коробку укладывают белье и перевязочный материал, необходимый для определенной операции;

в) видовая укладка –в стерилизационную коробку кладут только один вид изделия (операционное белье или перевязочный материал и др.).

 

Правила упаковки материала в стерилизационные коробки:

· стерилизационные коробки протираются изнутри ветошью с дезраствором;

· удаляются использованные индикаторы стерилизации;

· определяется вид укладки: видовой, целевой, универсальный;

· стерилизационные коробки без фильтров выстилаются пеленкой, биксы с фильтрами пеленкой можно не выстилать, если фильтры меняются через 30 циклов стерилизации;

· изделия, укладываемые в стерилизационные должны занимать не более 2\3 объема коробки;

· располагаются изделия параллельно движущемуся пару, рыхло, послойно и секторально;

· закладываются новые индикаторы стерилизации от 1 до 3-х в зависимости от объема стерилизационной коробки.

Наиболее ответственным моментом организации работы ЦСО является сохранение стерильности медицинских изделий при разгрузке из стерилизаторов, комплектовании их в стерильной зоне, при транспортировке и использовании в клинических отделениях.

Простерилизованные изделия должны оставаться в автоклаве в течение 1,5 –2 часа до полного остывания. Во время остывания не должно быть сквозняков в помещении и доступа холодного воздуха. ЦСО должна быть оборудована приточно-вытяжной вентиляцией. При разгрузке стерилизатора исключается присутствие других сотрудников ЦСО, кроме персонала стерильной зоны.

После стерилизации стерилизационные коробки выдаются в отделения только остывшими в 2-х мешках, один из которых снимается перед входом в кабинет.

 

Рекомендуемые страницы:

lektsia.com

Методы стерилизации

Виды стерилизации	Методы стерилизации	Действующий агент
Физический	паровой (автоклавирование)	пар под избыточным давлением (120 0С, давление 1,1 атм) (132 0С, давление 2,0 атм)
	воздушный	сухой воздух при 180 °С
	гласперленовый	нагретые стеклянные шарики при 190-240 0С
	инфракрасный	инфракрасное излучение при 200±3 0С
	лучевой	ионизирующее излучение 2- 2,5 Мрад
	ультразвуковой	механические колебания с частотой от 2х104 до 2х10 8 в сек
Химический	жидкостной	растворы химических соединений (альдегид-, кислород-, хлорсодержащих)
	газовый	окись этилена в смеси с углекислым газом, бромистым метилом и др.
	плазменный	пары 20 % пероксида водорода

Паровой метод стерилизации (автоклавирование)

Впервые стерилизация паром под повышенным давлением в автоклаве осуществлена в 1884 году Л.Л. Гендейрейхом.

При этом способе стерилизации действующим агентом является горячий пар. В автоклаве возможно нагревание воды под повышенным давлением, что приводит к по-вышению точки кипения воды и соответственно пара до 132 ⁰С (при давлении 2 атм.).

Паровым методом стерилизуют общие хирургические и специальные инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозионно-стойких металлов, стекла, шприцы с пометкой 200 ⁰С, хирургическое белье, перевязочный и шовный материал, изделия из резин (перчатки, трубки, катетеры, зонды и т.д.), латекса, отдельных видов пластмасс.

Табл. 3.

Режимы стерилизации некоторых медицинских инструментов

Способ стерилизации	Температура, 0С	Давление, атм.	Время стерилизации, мин	Вид изделий, рекомендуемых к стерилизации данным методом
Водяным насыщенным паром под избыточным давлением (автоклав)	132	2	20	Изделия из коррозионно-стойких металлов, стекла, изделия из текстильных материалов, резин, лигатурный шовный материал
	120	1,1	45	Изделия из резин, латекса, отдельных видов пластмасс (полиэтилен высокой плотности, ПВХ-пластикаты), лигатурный шовный материал
Сухим горячим воздухом (суховоздушный стерилизатор)	180	1	60	Изделия из металлов, стекла и резин на основе силиконового каучука

Материал для стерилизации помещают в специальные биксы Шиммельбуша, пергамент, бумагу мешочную, упаковочную, крепированную, стерилизационные коробки с фильтром.

Одним из основных условий проведения качественной стерилизации является загрузка автоклава в точном соответствии с рекомендациями производителя. Это означает правильное расположение и количество загружаемых предметов. Водяной пар должен свободно циркулировать, а конденсат своевременно выводиться. При загрузке автоклава обращают внимание на то, чтобы тяжелые инструменты располагались на нижних поддонах, а легкие – на верхних.

Изделия загружают в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемым изделиям. Не допускается перекрывать продувочные окна и решетки вентиляции. Загрузку и выгрузку изделий проводят при температуре не выше 40-50°С.

Срок хранения простерилизованных изделий: в биксах без фильтра, в двойной мягкой упаковке – 3 суток; в пергаменте, бумаге мешочной непропитанной, мешочной влагопрочной, бумаге упаковочной высокопрочной, бумаге крепированной, стерилизационной коробке с фильтром – 20 суток.

Воздушный метод стерилизации

При воздушном методе стерилизации стерилизующим средством является сухой горячий воздух температурой 160⁰С и 180⁰С; стерилизацию осуществляют в суховоздушных стерилизаторах.

Воздушным методом стерилизуют хирургические, гинекологические, стоматологические инструменты, детали приборов и аппаратов, в том числе изготовленные из коррозионно-нестойких металлов, шприцы с пометкой 200 ⁰С, инъекционные иглы, изделия из силиконовой резины.

Перед стерилизацией воздушным методом изделия после предстерилизационной очистки обязательно высушивают в сушильном шкафу при температуре 85 °C до исчезновения видимой влаги.

Качество стерилизации воздушным методом зависит от равномерности распределения горячего воздуха в стерилизационной камере, что достигается правильной загрузкой стерилизатора. Изделия загружают в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемому изделию.

Изделия стерилизуют завернутыми в стерилизационные упаковочные материалы. Шприцы стерилизуют в разобранном виде.

Во время стерилизации металлических инструментов без упаковки их располагают так, чтобы они не касались друг друга.

Стерилизация в среде нагретых стеклянных шариков (гласперленовая)

В стерилизаторах, стерилизующим средством в которых является среда нагретых стеклянных шариков (гласперленовые шариковые стерилизаторы), стерилизуют изделия, применяемые в стоматологии (боры зубные, головки алмазные, дрильборы, а также рабочие части гладилок, экскаваторов, зондов и др.). При стерилизации стеклянные шарики нагреваются до температуры 190-240 ⁰С. Стерилизация проводится в течение 5 — 15 секунд.

Недостатком метода является возможность стерилизации только мелких инструментов. У более крупных инструментов для такой обработки доступна только рабочая часть. А полная их стерилизация даже при увеличении экспозиции не удается. Проблемы возникают и со средствами контроля работы этих стерилизаторов.

Инфракрасная стерилизация

Существуют стерилизаторы, в которых используется метод, основанный на применении кратковременного импульсного инфракрасного излучения, создающего в рабочей камере температуру 200±3⁰С. Время инфракрасной стерилизации инструментария в неупакованном виде составляет от 10 до 25 минут. Недостатками данного метода стерилизации являются отсутствие упаковки инструментов, повреждающее воздействие на полимерные материалы и резину, отсутствие контролирующих индикаторов.

Лучевая стерилизация.

Используют гамма и бета — частицы и относительно тяжелые нейтроны, протоны и т. д. Разница вызываемых ими биологических изменений почти незаметна. Радиоактивное излучение, проходя через среду, вызывает ионизацию последней, в связи с чем его называют ионизирующим излучением. Бактерицидный эффект ионизирующего излучения обусловлен воздействием на метаболические процессы бактериальной клетки. Наибольшее применение получила стерилизация гамма-лучами. Используются изотопы Co⁶⁰ и Cs¹³⁸. Доза проникающей радиации значительна и составляет 2-2,5 Мрад. В связи с этим лучевая стерилизация в стационарах не производится и применяется в промышленных условиях.

Метод применяется для стерилизации одноразовых инструментов (шприцы, шовный материал, катетеры, зонды, системы для переливания крови, перчатки и др.). При сохранении целостности упаковки стерильные свойства предметов сохраняются в течение 5 лет.

Ультразвуковая стерилизация

Механические колебания с частотой от 2х10⁴ до 2х10 ⁸ колебаний в 1 секунду не воспринимаются ухом человека и называются ультразвуком. Для искусственного получения ультразвука служат специальные приборы. Источником ультразвука являются кристаллы кварца, турмалина, обладающие пьезоэлектрическими свойствами. Пьезоэлектрический эффект обусловлен явлением электрической поляризации кристаллов.

При воздействии на ткани ультразвуковой волны происходит образование микроскопических полостей, которые быстро закрываются под воздействием последующего сжатия. Такое явление называется кавитацией. Ультразвуковая кавитация приводит к образованию свободных радикалов, диссоциации молекул воды на ионы Н⁺ и ОН^—, что приводит к нарушению окислительно-восстановительных процессов в микробной клетке.

Ультразвуковые волны используются для стерилизации инструментов, подготовки рук медицинского персонала к операции. Для этого руки (инструменты) погружают в специальную ванну с дезинфицирующим раствором, через который пропускают ультразвуковые волны.

Стерилизация растворами химических средств

Стерилизация изделий растворами химических средств является вспомогательным методом, поскольку изделия нельзя простерилизовать в упаковке, а по окончании стерилизации их необходимо промыть стерильной жидкостью (питьевая вода, 0,9 % раствор натрия хлорида), что при нарушении правил асептики может привести к вторичному обсеменению простерилизованных изделий микроорганизмами.

Данный метод следует применять для стерилизации изделий, в конструкцию которых входят термолабильные материалы, то есть в тех случаях, когда особенности материалов изделий не позволяют использовать другие официально рекомендуемые методы стерилизации.

Для стерилизации растворами химических средств используют такие средства, как первомур, перекись водорода, дезоксон — 1, 4, стераниос 20%, сайдекс, лизоформин-3000, глютарал и др.

При стерилизации растворами химических средств используют стерильные емкости из стекла, металлов, термостойких пластмасс, выдерживающих стерилизацию паровым методом, или покрытые эмалью (эмаль без повреждений).

Температура растворов, за исключением специальных режимов применения перекиси водорода и средства Лизоформин 3000, должна составлять не менее 20⁰С для альдегидсодержащих средств и не менее 18⁰С – для остальных средств.

Стерилизацию проводят при полном погружении изделий в раствор, свободно их раскладывая. При большой длине изделия его укладывают по спирали. Разъемные изделия стерилизуют в разобранном виде. Каналы и полости заполняют раствором.

После стерилизации все манипуляции проводят, строго соблюдая правила асептики. Изделия извлекают из раствора с помощью стерильных пинцетов (корнцангов), удаляют раствор из каналов и полостей, а затем промывают в стерильной жидкости, налитой в стерильные емкости, согласно рекомендациям методического документа по применению конкретного средства. При каждом переносе из одной емкости в другую освобождение каналов и полостей и их заполнение свежей жидкостью осуществляют с помощью стерильного шприца, пипетки или иного приспособления.

Промытые стерильные изделия после удаления остатков жидкости из каналов и полостей используют сразу по назначению или помешают (с помощью стерильных пинцетов, корнцангов) на хранение в стерильную стерилизационную коробку, выложенную стерильной простыней, на срок не более 3 суток.

Газовая стерилизация

Для газового метода стерилизации используют смесь ОБ (смесь окиси этилена и бромистого метила в весовом соотношении 1:2,5 соответственно), окись этилена, пары раствора формальдегида в этиловом спирте, а также озон (табл. 4) .

Стерилизацию смесью ОБ и окисью этилена проводят при комнатной температуре (не менее 18⁰С), при температуре 35⁰С и 55⁰С, парами раствора формальдегида в этиловом спирте при температуре 80⁰С.

Табл. 4.

studfiles.net