Проверка качества стерилизации
Контроль за стерильностью может проводиться прямым и непрямым (косвенным) способами. Прямой способ — бактериологический, проводится посев со стерильных предметов. Его производят следующим образом: в операционной вскрывается бикс, маленькими кусочками марли, увлажненной изотоническим раствором хлорида натрия, несколько раз проводят по белью, после чего их опускают в пробирку. Взятый таким образом материал направляют на бактериологическое исследование. Бактериологический контроль проводят один раз в 10 дней. Он является самым надежным методом контроля стерильности.
Для непосредственного контроля стерильности материала применяются непрямые способы. Благодаря им можно оценить качество стерилизации каждого бикса. Непрямые методы основаны на закладывании в стерилизуемые биксы термоиндикаторов, которые показывают, прошел ли стерилизуемый материал определенный температурный режим. Для индикаторов используют вещества с определенной точкой плавления: бензойную кислоту (120°С), мочевина (132°С), тиомочевину (180°С). Их помещают в ампулы. Индикаторы закладывают вместе со стерилизуемыми предметами. Расплавление порошка и превращение его в сплошную массу свидетельствует, что температура стерилизации была равна точке плавления контрольного вещества или превышала ее.
Обработка рук
Целью хирургической дезинфекции рук является надежное освобождение их от микроорганизмов на длительный срок. Подготовка рук хирурга и его помощников к операции сопряжена с большими трудностями, в связи с невозможностью использовать для этого высокую температуру и концентрированные растворы антисептиков. Особое затруднение вызывает обеззараживание рук от микробов, скапливающихся в выводных протоках сальных, потовых желез и в волосяных мешках. В связи с этим наряду со смыванием бактерий и уничтожением их на поверхности кожи антисептиками все методы включают как обязательный компонент дубление кожи, чтобы сузить поры и воспрепятствовать проникновению микробов на ее поверхность во время операции.
Принцип хирургической дезинфекции рук – сначала механическая очистка, а затем дезинфекция. Кисти и предплечья предварительно обрабатывают в течение 2-5 минут мылом и щеткой. Особое внимание уделяют обработке ногтевых лож и складок кожи, межпальцевых промежутков. После этого руки споласкивают и вытирают стерильными салфетками. На заключительном этапе используют дезинфицирующие средства. Которые должны отвечать следующим требованиям:
быстро убивать патогенную микрофлору.
надежно убивать микробы в перчаточном соке, чтобы руки оставались обеззараженными в течение всей операции.
обладать кумулятивным действием, чтобы руки хирурга оставались обедненными микроорганизмами и в промежутках между процедурами дезинфекции.
не оказывать раздражающего действия на кожу.
Метод Спасокукоцкого — Кочергина.
Вначале руки моют под краном горячей водой, смывая “трамвайную грязь” (выражение акад. С. И. Спасокукоцкого). После мытья мылом и теплой водой руки моют в течение 6 минут, (2 раза по 3 минуты) в двух тазах в 0,5 % растворе аммиака, пользуясь как мочалкой, так и марлевой стерильной салфеткой. Тазы перед наливанием растворов обжигают спиртом. После такого мытья руки насухо вытирают стерильным полотенцем и протирают марлевым шариком или небольшой салфеткой, обильно смоченной 96 % этиловым спиртом. Затем многие хирурги смазывают ногтевые ложа с складки кожи на тыльной поверхности сгиба пальцев 5 % спиртовым раствором йода (йодоната). Хотя сами авторы метода этого не рекомендовали. Однако опыт показывает, что такое дополнение вреда не приносит, а создает больше уверенности в дублении кожи.
Метод Альфельда принадлежит к числу старейших методов, предложенных для обработки рук. Руки моют мылом и щетками под краном в течение 10 минут. Начинают с обычного мытья рук мылом и теплой водой, после чего берут корцангом стерильную щетку и, намылив ее, приступают к систематической обработке кистей и предплечий. Последовательно, начиная с 1 пальца, протирают щеткой пальцы, не пропуская ни одного миллиметра поверхности кожи, тщательно обрабатывают подногтевые пространства, ногтевые валики и складки кожи кисти, переходят на предплечье. Обрабатывают вплоть до локтевого сгиба. Руки держат так, чтобы вода стекала от кистей к предплечьям. На каждую руку затрачивают по 2 минуты, после чего смывают мыло теплой проточной водой, и взяв поданную медсестрой или санитаркой вторую стерильную щетку, повторяют процедуру последовательной обработки пальцев, кистей и нижней трети предплечья, затрачивая на это еще 5 минут. Смывают мыло тепло проточной водой и вытирают руки стерильным полотенцем или салфеткой. Сухие руки протирают салфеткой, обильно смоченной 96 % спиртом, в течение 3 минут и смазывают ногтевые ложа спиртовым раствором йода.
Обработка рук раствором перекиси водорода и муравьиной кислоты. Рецептуру “С-4” готовят в день операции из необходимого количества 30-33 % перекиси водорода (пергидроля) и 85-100 % муравьиной кислоты, которые смешивают в стерильном сосуде в соотношении 1:2,4 и хранят не более суток в посуде с герметической пробкой в прохладном месте. Для обработки рук используют 2,4 % раствор рецептуры “С-4”.
Перед обработкой рук раствором рецептуры “С-4” их моют водой с мылом (без щетки) в течение 1 минуты, вытирают насухо стерильной салфеткой, затем руки обрабатывают в течение 1 минуты рецептурой “С-4” в эмалированном тазу. Вытирают стерильной салфеткой и надевают стерильные перчатки.
Обработка рук хлоргексидин биглюконатом. Для обработки рук используют 0,5 % спиртовой раствор препарата (препарат разводят в 70 % спирте в соотношении 1:40). После предварительного мытья рук с мылом и последующего протирания стерильной марлевой салфеткой производят их обработку двумя ватными тампонами, смоченными в 0,5 % спиртовом растворе хлоргексидина в течение 2-3 минут.
Обработка рук дегмином и дегмицидом. Руки перед обработкой дегмином или дегмицидом моют теплой водой с мылом в течение 2-3 минут, тщательно ополаскивают их и протирают двумя тампонами, обильно смоченными 1 % раствором препарата, по 3 минуты каждым. После этого стерильными салфетками вытирают руки насухо и надевают стерильные перчатки.
Обработка рук церигелем. Препарат содержит цетилпиридиний хлорид – катионный детергент, обладающий большой поверхностной активностью. Бесцветная, опалисцирующая жидкость церигеля, нанесенная на кожу, после испарения спирта образует тонкую асептическую полимерную пленку (воздействие поливинилбутираля).
После предварительной обработки рук мылом на сухую кожу наносят 3-4 г церигеля и в течение 8-10 с тщательно растирают так, чтобы препарат покрыл ладонные и тыльные поверхности, межпальцевые промежутки и дистальную треть предплечья. Руки высушивают на воздухе или под вентилятором в течение 2-3 минут, следя за тем, чтобы пальцы не соприкасались и были слегка согнуты. Способ обработки рук эффективен в экстренных ситуациях, во время работы в перевязочной, при первичной хирургической обработке ран и т. д., полимерная пленка смывается с рук после операции или манипуляции 95 % этиловым спиртом.
Обработка рук йодофором. Очень эффективным и быстрым способом является обработка йодофором (1 % йодопирон-поливинилпиролидон, повидон-йодин-бетадин) и гексахлорофеном в мыльном растворе (шампунь) в течение 3-5 минут. Одновременно достигается очистка и дезинфекция рук, после чего их высушивают салфеткой и надевают стерильные перчатки.
Обработка рук ультразвуком. Сконструированы специальные аппараты с ультразвуковыми ваннами, в которых мытье и дезинфекция рук происходит в течение 1 минуты. Руки погружают в раствор антисептика (0,5 % водный раствор гибитана), через который пропускаются ультразвуковые волны, которые и обеспечивают дезинфекцию.
Обработка рук роккалом. Роккал – поверхностно-активное вещество, обладающее моющим и дезинфицирующим действием. Выпускается в баллонах разной вместимости в 10 % и 1 % растворе, прозрачная желтоватая жидкость.
Руки, предварительно вымытые с мылом, хорошо ополаскивают и погружают в таз с раствором роккала 1:1000 на 2 минуты. Для разведения роккала пользуются только дистиллированной водой.
Обработка рук йодопироном. Руки моют в проточной воде с мылом в течение 1 минуты и вытирают стерильной салфеткой, затем руки погружают в таз с 1 % раствором йодопирона и моют в течение 4 минут стерильной марлевой салфеткой.
Обработка рук хибискрабом. Руки смачивают водой до локтей и наносят 5 мл хибискраба, моют в течение 1 минуты. Затем руки тщательно смываются и повторно применяют 5 мл хибискраба и моют руки в течение 2 минут. Дезинфектор смывается стерильным физиологическим раствором.
Обработка рук препаратом СЕПТОЦИД Р ПЛЮС.
Моют руки водой с мылом, предпочтительно жидким (рН-нейтральный), без использования жестких щеток. Высушивают стерильной разовой салфеткой или полотенцем. Обрабатывают ногтевые ложа, околоногтевые валики одноразовыми стерильными деревянными палочками, смоченными антисептиком. Продолжительность не менее 1 мин. Наносят антисептик на кисти рук и предплечья порциями по 2,5-3 мл. Расход на одну обработку – 10 мл.
Втирают антисептик в кожу рук, не допуская высыхания. Продолжительность обработки 5 мин.
НАДЕВАНИЕ ОПЕРАЦИОННОЙ ОДЕЖДЫМедицинский персонал (хирург, ассистенты, операционные сестры) после хирургической дезинфекции рук надевают стерильные (свободные от микроорганизмов) халаты. Для операционных халатов не подходит рыхлый текстильный материал, многократно бывший в употреблении, т. к. он становится проницаемым для пота и бактерий, содержащихся на коже членов операционной бригады (появляются на халате уже через 30 минут работы). Лучше всего использовать белье и халаты из плотного импрегнированного хлопчатобумажного материала. Манжеты и завязки должны быть эластичными и не сдавливать запястья и кисти. Маска должна плотно закрывать рот и нос.
После хирургической дезинфекции рук микроорганизмы на коже отсутствуют. Однако, вскоре из протоков потовых желез, волосяных мешочков, микротрещин на поверхности кожи снова появляются микроорганизмы, поэтому с целью асептического проведения операции необходимо изолировать руки стерильными резиновыми перчатками.
При надевании перчаток нельзя притрагиваться к их наружной поверхности оголенной рукой.
Во время работы в перчатках руки становятся влажными, там скапливается так называемый перчаточный сок, который содержит концентрат вирулентной микрофлоры, поэтому и перед операцией и во время ее необходимо обращать пристальное внимание на целостность перчаток. Поврежденную перчатку необходимо тотчас же сменить. Если операция продолжительная, во время работы через каждые 45-60 минут перчатки обрабатывают 2,4 % первомура и протирают 96 % этиловым спиртом. Обработку перчаток необходимо проводить также после каждого этапа операции, предусматривающего вскрытие полого органа.
ОБРАБОТКА ОПЕРАЦИОННОГО ПОЛЯ
Подготовка операционного поля начинается в предоперационном периоде (гигиеническая ванна, очистка загрязнений эфиром или бензином, обработка кожи зеленым или калиевым мылом, бритье волос в области операционного поля). Накануне операции больной принимает ванну, ему меняют белье. Утром, в день операции, волосы в области операционного поля тщательно обривают. Для бритья следует применять острые бритвы, не вызывающие раздражения кожи. После бритья кожу протирают спиртом. Волосяной покров в области предстоящего оперативного вмешательства можно также удалять с помощью специального крема-депилятора. Это обеспечивает удобство при обработке кожи в зоне складок и уменьшает опасность микроповреждений, что наблюдается при обработке лезвием бритвы.
Классический метод обработки операционного поля по методу Гроссиха-Филончикова – смазывание 5 % спиртовым раствором йода сейчас не применяется. Для обработки кожи операционного поля в настоящее время чаще всего используют йодонат, йодопирон, 0,5 % спиртовой раствор хлоргексидина биглюконата
Основные правила обработки операционного поля:
1. Производить обработку широко.
2. Обработку производить от центра к периферии.
3. Более загрязненные участки обрабатывать в последнюю очередь.
4. Обработка производится многократно.
Первый раз смазывают операционное поле перед наложением стерильного белья, второй – после наложения белья, третий – перед зашиванием кожи и четвертый раз – после наложения швов на кожу. Как показали многочисленные исследования, йод дубит кожу и, проникая в глубину складок и пор, дезинфицирует ее.
Для обработки операционного поля используются и другие антисептические вещества (1 % раствор дегмицида, 1 % раствор роккала или катамина А-Б, 2,4 % раствор первомура). Для дезинфекции слизистых их смазывают 1 % раствором бриллиантового зеленого, 3 % раствором перекиси водорода, 1 % раствором йодоната или йодопирона, а также 0,5 % спиртовым раствором гибитана.
Для изоляции кожи операционного поля можно применять специальную стерильную пленку (протектор).
ПРОФИЛАКТИКА ИМПЛАНТАЦИОННОЙ ИНФЕКЦИИ
Предупреждения имплантационного инфицирования достигается обеспечением строжайшей стерильности всех предметов, внедряемых в организм больного.
Особенностью имплантационного пути является то, что в 100 % случаев инфицирование приводит к развитию гнойно-воспалительного процесса. Инородные тела оставляемые в тканях при этом длительно поддерживают воспалительный процесс. В некоторых случаях может происходить инкапсуляция инфицированных имплантантов, при этом микроорганизмы не погибают, и могут стать источником вспышки гнойного процесса в отдаленном послеоперационном периоде. Образуется источник дремлющей инфекции.
Источники имплантационной инфекции.
шовный материал
эндопротезы
металлические конструкции (скобки сшивающих аппаратов, винты, спицы, шурупы, пластинки для остеосинтеза),
специальные приспособления (кавафильтры, спирали, стенты и пр.)
трансплантированные органы и ткани.
СТЕРИЛИЗАЦИЯ ШОВНОГО МАТЕРИАЛА
Хирургический шовный материал должен быть стерильным, прочным на разрыв и хорошо переноситься тканями, а после выполнения своей фиксирующей функции по возможности рассасываться. В настоящее время имеется много видов шовного материала. Его принято разделять на материал естественного и искусственного происхождения. Шовный материал естественного происхождения: шелк, хлопчатобумажная нить и кетгут. Искусственный шовный материал изготавливается из синтетических химических веществ: капрон, лавсан, фторлон, полиэстер, дакрон и пр.
Стерилизация шовного материала достигается разными способами: термическим, химическим, гамма-облучением.
Стерилизация шелка.
Метод Кохера. Мотки шелка моют в теплой воде с мылом, затем высушивают. Намотанный на катушку шелк спускают в эфир на 12-24 часа для обезжиривания. После извлечения стерильным инструментом из эфира шелк погружают на тот же срок в 70 % этанол. После извлечения из спирта шелк кипятят 10-20 минут в растворе сулемы 1:1000. Хранят стерильный шелк в герметических закрытых банках с 95 % этиловым спиртом. Через двое суток проводят бактериологический контроль. Если посев будет стерильным шелк можно применять. В герметических банках спирт меняется через каждые 7 дней.
Стерилизация кетгута. Кетгут является материалом органического происхождения. Изготавливают кетгут из подслизистого слоя тонких кишок крупного рогатого скота или свиней. Как гетерогенный белок, он может вызвать сильную реакцию тканей. Преимуществом кетгута является то, что через 6-12 дней он резорбцируется в организме. За счет хромирования (хромированный кетгут) резорбция кетгута в организме может быть продлена до 15-40 дней. Задубленный кетгут не токсичен. Хромированный кетгут выпускается в ампулах или в упаковке из алюминиевой фольги с консервирующим раствором (спирт ректификат 96 % — 89 мл, глицерин 6 мл, бензин авиационный 1 мл, вода дистиллированная 4 мл), его стерилизуют гамма-облучением
Сухой способ стерилизации нитей кетгута в парах йода (по Ситковскому). Кетгут опускают в эфир на 12-24 часа. Стандартную нить кетгута разрезают на три части и тщательно протирают марлевым тампоном, смоченным в растворе дихлорида ртути 1:1000. Нити, обработанные сулемой, опускают в 2 % водный раствор йодида калия. Это делает кетгут восприимчивым к парам йода. Экспозиция в этом растворе определяется толщиной нити (все нулевые номера — на 30 сек., а остальные — на число минут, соответствующее номеру нити). Кетгут сматывают в колечки, нанизывают на длинные нити и в два ряда подвешивают в стерильную стеклянную банку с притертой крышкой. Расстояние кетгута от дна банки — 60-70 мм. На дно банки предварительно насыпают кристаллический йод, обязательно учитывая величину банки и сохраняя необходимую концентрацию паров йода. Расчет 20 пакетов сухого кетгута: в банку емкостью 3 л — 40 г йода, в банку емкостью 5 л — 60 г йода. Пробку банки заливают парафином (поверх стерильной марлевой салфетки). Ежесуточно банку встряхивают для обеспечения свободного доступа паров йода во все промежутки между кетгутом. Кетгут тонкий (№ 0-1) готов через 3 суток, № 2,3, 4 — через 4 суток, № 5 и 6 — через 5 суток. По истечении срока стерилизации кетгут перекладывают в сухую стерильную банку, беря в это время посев на стерильность.
Способ стерилизации нитей кетгута спиртовым люголевским раствором (по Губареву). Сухие нити кетгута не длиннее 1 м свертывают в колечки и заливают эфиром на 12-24 часа. Эфир сливают. Кетгут заливают на 8-10 суток спиртовым люголевским раствором (спирт 96 % — 1000 г, йодид калия — 10 г, чистый йод — 10 г). Кетгут повторно заливают свежим люголевским раствором еще на 8-10 суток. На 16-20 сутки от начала стерилизации кетгут подвергают бактериологической проверке и при благоприятных результатах разрешают им пользоваться. Хранят кетгут в люголевском растворе, меняя его каждые 7-10 суток.
Способ стерилизации нитей кетгута в водном люголевском растворе (по Гейнац-Клаудиусу). Сухие нити кетгута не длиннее 1 м свертывают в колечки и заливают эфиром на 12-24 часа. Эфир сливают, и кетгут заливают на 8-10 суток водным люголевским раствором (дистиллированная вода — 1000 г, йодид калия — 20 г, чистый йод — 10 г). Через 8-10 суток водный люголевский раствор заменяют свежим и снова оставляют в нем кетгут на 8-10 суток. Через 16-20 суток от начала стерилизации раствор сливают и кетгут заливают 96 % этиловым спиртом на 4-6 суток, после чего берут посев на стерильность. Хранят кетгут в 96 % спирте, который меняют каждые 7-10 дней.
Каждую порцию кетгута подвергают обязательному бактериологическому контролю. Посев берут из каждой банки от разных нитей кетгута в 6 пробирок: 3 на бульон и 3 на среду Тароцци. Результаты лабораторных исследований бережно сохраняют. На банку с кетгутом, допущенную к употреблению, наклеивают этикетку с указанием номера кетгута, даты начала и конца стерилизации, даты и номера бактериологического анализа.
Стерилизация капрона. Капрон можно стерилизовать кипячением в течение 20 минут.
Стерилизация лавсана. Лавсановые нити могут стерилизоваться автоклавированием, кипячением, а также раствором диоцида (1:1000-1:5000).
Большинство видов современного шовного материала стерилизуется в заводских условиях гамма-облучением.
Контроль за стерильностью шовного материала осуществляется бактериологическим методом.
СТЕРИЛИЗАЦИЯ КОНСТРУКЦИЙ, ПРОТЕЗОВ,
ТРАНСПЛАНТАТОВ
Способ стерилизации различных конструкций и протезов зависит от вида материалов, из которого они изготовлены.
Металлические конструкции стерилизуются в автоклаве, сухожаровом шкафу или кипячением.
Тканевые протезы стерилизуют кипячением или в газовом стерилизаторе.
Протезы сложных конструкций стерилизуются химическими способами в газовом стерилизаторе или химическими антисептиками.
В настоящее время большинство протезов выпускается простерилизованными в заводских условиях гамма-облучением.
Произвести стерилизацию биологических трансплантатов невозможно, поэтому гарантией профилактики инфицирования является соблюдение правил асептики при заборе органов или тканей.
ПРОФИЛАКТИКА ЭНДОГЕННОЙ ИНФЕКЦИИ
Наиболее опасен эндогенный источник контаминации во время оперативного вмешательства и раннем послеоперационном периоде. Профилактика контаминации обеспечивается следующими мероприятиями:
обследование и санация больных до операции.
подготовка дыхательных путей к наркозу и операции.
подготовка желудочно-кишечного тракта к операции.
отграничение при вскрытии полых органов.
обработка просвета полого органа до и после вскрытия.
Обследование больного позволяет диагностировать сопутствующие заболевания, которые могут способствовать ослаблению защитных сил организма (сахарный диабет, хроническая пневмония, туберкулез и др.), а также выявить очаги хронической инфекции (тонзиллит, кариес, парадонтоз, гнойные очаги и т. п.). При выявлении указанных патологических процессов производится направленная санация или коррекция соответствующих расстройств гемостаза.
Подготовка дыхательных путей особенно важна при ингаляционном наркозе и легочной патологии. Больные, особенно пожилого возраста, должны быть обучены дыхательной гимнастике до операции. В день операции важно снизить секрецию бронхиальных желез: вводится п/кожно, в/мышечно, в/венно 0,1 % раствор атропина 0,3-1,0 мл. у больных гнойными заболеваниями легких производят промывание бронхиального дерева с помощью бронхоскопа или введение в трахею антисептиков путем ингаляции, бронкоскопа или пункции трахеи.
Подготовка желудочно-кишечного тракта к операции осуществляется путем механической очистки и введения антибактериальных препаратов.
При операции на желудке механическая очистка требуется только при наличии задержки его опорожнения (стеноз привратника), или при операциях на других органах брюшной полости, если она производится в экстренном порядке под наркозом (непроходимость кишечника, травма, перитонит без повреждения или прободения стенки желудка и 12-перстной кишки). В обычных условиях достаточно ограничить прием пищи вечером, и утром желудок будет пуст.
Подготовка кишечника осуществляется путем назначения слабительных препаратов за 24 часа до операции, а при наличии сужения кишечника – за 48 часов. За 24 часа назначается прием антибактериальных препаратов через рот, которые угнетают микрофлору кишечника (левомицетин, бисептол, трихопол). Вечером и утром перед операцией производятся очистительные и сифонные клизмы.
Перед вскрытием полых органов брюшной полости производится дополнительное отграничение в зоне предполагаемого разреза органа с помощью больших салфеток, смоченных антисептическими растворами (фурациллин 1:5000 или хлоргексидин 1:1000). Возможно отграничение с помощью клеенки, полиэтиленовой пленки.
После дополнительного обкладывания и вскрытия производится обработка антисептиками полости полого органа (внутренней поверхности), подлежащего вскрытию. При резекции желудка, отжатая культя тщательно повторно промывается через назогастральный зонд раствором фурациллина (1:5000), перед вскрытием кишечника (особенно ободочной или прямой кишки) просвет его, в области предполагаемого вскрытия, вводятся антибиотики, антисептики или комбинации их (канамицин, метронидозол, гентамицин, диоксидин, левомицетин).
После вскрытия полого органа просвет его осушается марлевыми салфетками (электроотсосом), а затем слизистая обрабатывается 1 % водным раствором гибитана или йодоната.
ПРОБЛЕМА СПИДА В ХИРУРГИИ
Чумой двадцатого века называют СПИД (синдром приобретенного иммунодефицита). Также как в прошлые века чума приносила огромные бедствия человечеству, так и СПИД представляет в настоящее время реальную угрозу для людей. С каждым годом растет количество больных и инфицированных. Распространение СПИДа поставило перед хирургами ряд серьёзных проблем. Работа хирурга связана с постоянным контактом с кровью, другими жидкими средами организма. Поэтому актуальной проблемой современной асептики является профилактика проникновения в процессе лечения в организм больного и медперсонала вируса иммунодефицита человека.
Профилактика распространения СПИДа в хирургии включает целый комплекс мероприятий. Выделяют четыре вида мероприятий:
выявление вирусоносителей
выявление больных СПИДом
соблюдение техники безопасности для медперсонала
изменение правил стерилизации инструментов
Выявление вирусоносителей.
Должно проводиться на догоспитальном этапе у плановых больных, у экстренных во время стационарного лечения. Пациенты, относящиеся к группе риска, должны быть обследованы на ВИЧ.
Выявление больных СПИДом. Любой врач должен знать характерные проявления заболевания, постоянно помнить о них и проявлять активность в проведении диагностических мероприятий. Длительное время врачи нацеливались на проявление онкологической настороженности, т. е. стремление к раннему и активному выявлению злокачественных опухолей. В настоящее время такая же настороженность должна выработаться по отношению СПИДа.
Соблюдение техники безопасности.
В настоящее время разработан комплекс профилактических мероприятий, который должен соблюдать любой медицинский работник. Их можно разделить на две группы. Первая предусматривает меры препятствующие попаданию крови, отделяемого больного на слизистые и кожу персонала. Согласно этим требованиям все манипуляции с кровью должны выполнятся в перчатках, врачи и сестры обязаны надевать защитные очки, фартуки.
Четко разработаны мероприятия на случай, если на кожу или слизистую попала какая-либо жидкость от больного. В таких случаях медработник обязан провести обработку антисептиками согласно инструкциям. Предусмотрены также обязательные мероприятия по обработке окружающих предметов и оборудования, при попадании на них крови или жидкого отделяемого.
Изменение правил стерилизации инструментов.
В настоящее время имеется тенденция к использованию одноразового инструментария. Для инструментария многоразового использования сейчас ужесточены правила предстерилизационной подготовки, обработка должна гарантировать уничтожение вируса иммунодефицита человека.
studfiles.net
7. Контроль качества стерилизации
Виды контроля:
— химический;
— технический;
— бактериологический.
Контроль индикаторами интегрированного (термовременного) действия
В воздушном шкафу | В автоклаве | ||
ИС-180 | 180°С | ИС-132 | 132°С |
ИС-160 | 160°С | ИС-120 | 120°С |
Индикаторы стерильности фирмы «Винар» представленные выше изменяют окраску до эталона только при воздействии на них температуры стерилизации в течение всей стерилизационной выдержки.
При каждом цикле полоски индикатора закладываются в контрольные точки стерилизатора. Если окраска индикатора в какой-нибудь точке светлее эталона, все изделия считаются нестерильными.
Серия «СТЕРИКОНТ» — самоклеющиеся индикаторы 4 класса для контроля всех критических параметров паровой (120°/45′, 132°/20′) и воздушной, (160°/150′, 180/60′) стерилизация в камере стерилизатора (снаружи стерилизуемых упаковок)
Серия «СТЕРИТЕСТ» — самоклеющиеся индикаторы для контроля всех критических параметров паровой, 4 класса (120°/45′, 132°/20′) и воздушной 5 класса (160°/150′, 180°/60′, 200°/30′) стерилизация внутри стерилизуемых упаковок.
Серия «ИНТЕСТ» — самоклеющиеся индикаторы 4 класса для контроля всех критических параметров паровой стерилизации, как в камере стерилизатора, так и внутри стерилизуемых упаковок в форвакуумных стерилизаторах при режимах: 121°/20′, 126°/10′, 134°/5′.
Технический метод контроля
Запись показателей температуры, давления, времени начала и окончания стерилизации в специальный журнал.
Бактериологический метод контроля
Проводят с помощью биотеста — объекта из определенного материала, обсемененного тест-микроорганизмами. В качестве носителей используют небольшой флакон, содержащий споры В.Lichemiformis. Контроль проводят b соответствии с утвержденной методикой. Существуют и готовые сертифицированные тесты со спорами В.Lichemiformis с цветными питательными средами, позволяющими провести бактериологический контроль непосредственно в ЦСО при наличии в нем термостата.
Контрольные посевы с различных простерилизованных изделий берутся работниками СЭС.
8. Транспортировка и перекладывание больного
Способ транспортировки пациента в отделение определяет врач в зависимости от тяжести состояния пациента:
— на носилках;
— на каталке;
— на кресле-каталке;
— на руках;
— пешком.
Транспортировка на носилках
Последовательность выполнения:
1. Поднимайте и опускайте осторожно и одновременно, удерживайте их в горизонтальном направлении.
2. Не допускайте раскачивания носилок, толчков, резких поворотов, для этого идите в ногу.
3. По ровной местности и при подъеме по лестнице носилки несите головным концом вперед, приподнимайте ножной конец, а при спуске с лестницы — ногами вперед, приподнимайте ножной конец.
4. Если кто-либо из санитаров при переноске почувствовал усталость, то следует немедленно сообщить об этом, так как уставшие пальцы рук могут непроизвольно расслабиться.
Транспортировка на каталке
Наиболее удобный и щадящий способ транспортировки тяжелобольных.
Последовательность выполнения:
1. Поставьте каталку перпендикулярно кушетке так, чтобы ее головной конец подходил к ножному концу кушетки.
2. Встаньте возле пациента все трое с одной стороны: один подводит руки под голову и лопатки пациента, второй — под область таза и верхнюю область бедер, третий — под середину бедер и голени.
3. Поднимите пациента и повернитесь с ним на 90° в сторону каталки.
4. Уложите пациента на каталку и укройте одеялом.
5. Транспортируйте пациента в отделение головным концом каталки вперед.
6. В палате головной конец каталки, подведите к ножному концу кровати, поднимите пациента и, повернувшись на 90°, положите его на подготовленную кровать, укройте одеялом.
7. Каталку после использования продезинфицируйте.
8. Проведите гигиеническую обработку рук.
Транспортировка на кресле-каталке
Последовательность выполнения:
1. Наклоните кресло-каталку вперед, наступив на подставку для ног
2. Попросите пациента встать на подставку для ног, затем, поддерживая его, усадите в кресло.
3. Опустите кресло-каталку в исходное положение.
4. С помощью рамки, расположенной за спинкой кресла-каталки, придайте пациенту нужное положение: сидя, полулежа или лежа.
5. Транспортируйте пациента в отделение, следите, чтобы его руки не выходили за пределы подлокотников кресла-каталки.
6. В палате помогите пересесть на приготовленную кровать, уложите, укройте его.
7. Кресло-каталку продезинфицируйте.
8. Проведите гигиеническую обработку рук.
Перекладывание больного с кушетки на каталку и с каталки на кушетку
Перекладывание больного вдвоем:
1-й санитар — подводит руки под шею и лопатки больного;
2-й санитар — под поясницу и колени.
В палате головной конец носилок ставя к ножному концу кровати.
Носилки можно поставить по отношению к кровати: параллельно (санитары укладывают больного на кровать, повернувшись на 180°), вплотную, последовательно, перпендикулярно.
При любом способе транспортировки сопровождающий обязан передать больного и его медицинскую карту палатной медсестре!
studfiles.net
2.Стерилизация, сущность, варианты, применение. Контроль качества стерилизации.
Стерилизация предполагает полную инактивацию микробов в объектах, подвергающихся обработке.
Существует три основных метода стерилизации: тепловой, лучевой, химической.
Тепловая стерилизация основана на чувствительности микробов к высокой температуре. При 60 «С и наличии воды происходит денатурация белка, деградация нуклеиновых кислот, липидов, вследствие чего вегетативные формы микробов погибают. Споры, содержащие очень большое количество воды в связанном состоянии и обладающие плотными оболочками, инактивируются при 160—170 °С.
Для тепловой стерилизации применяют, в основном, сухой жар и пар под давлением.
Стерилизацию сухим жаром осуществляют в воздушных стерилизаторах (прежнее название — «сухожаровые шкафы или печи Пастера»). Воздушный стерилизатор представляет собой металлический плотно закрывающийся шкаф, нагревающийся с помощью электричества и снабженный термометром. Обеззараживание материала в нем производят, как правило, при 160 °С в течение 120 мин. Однако возможны и другие режимы: 200 °С — 30 мин, 180 «С — 40 мин.
Стерилизуют сухим жаром лабораторную посуду и другие изделия из стекла, инструменты, силиконовую резину, т. е. объекты, которые не теряют своих качеств при высокой температуре.
Большая часть стерилизуемых предметов не выдерживает подобной обработки, и поэтому их обеззараживают в паровых стерилизаторах.
Обработка паром под давлением в паровых стерилизаторах (старое название — «автоклавы») является наиболее универсальным методом стерилизации.
Паровой стерилизатор (существует множество его модификаций) — металлический цилиндр с прочными стенками, герметически закрывающийся, состоящий из водопаровой и стерилизующей камер. Аппарат снабжен манометром, термометром и другими контрольно-измерительными приборами. В автоклаве создается повышенное давление, что приводит к увеличению температуры кипения.
Поскольку кроме высокой температуры на микробы оказывает воздействие и пар, споры погибают уже при 120 °С. Наиболее распространенный режим работы парового стерилизатора: 2 атм — 121 °С — 15—20 мин. Время стерилизации уменьшается при повышении атмосферного давления, а следовательно, и температуры кипения (136 °С — 5 мин). Микробы погибают за несколько секунд, но обработку материала производят в течение большего времени, так как, во-первых, высокая температура должна быть и внутри стерилизуемого материала и, во-вторых, существует так называемое поле безопасности (рассчитанное на небольшую неисправность автоклава).
Стерилизуют в автоклаве бульшую часть предметов: перевязочный материал, белье, коррозионно-устойчивые металлические инструменты, питательные среды, растворы, инфекционный материал и т. д.
Одной из разновидностей тепловой стерилизации является дробная стерилизация, которую применяют для обработки материалов, не выдерживающих температуру выше 100 °С, например, для стерилизации питательных сред с углеводами, желатина. Их нагревают в водяной бане при 80 °С в течение 30—60 мин.
В настоящее время применяют еще один метод тепловой стерилизации, предназначенный специально для молока — ультравысокотемпературный (УВТ): молоко обрабатывают в течение нескольких секунд при 130—150 °С.
Химическая стерилизация предполагает использование токсичных газов: оксида этилена, смеси ОБ (смеси оксида этилена и бромистого метила в весовом соотношении 1:2,5) и формальдегида. Эти вещества являются ал-килирующими агентами, их способность в присутствии воды инактивировать активные группы в ферментах, других белках, ДНК и РНК приводит к гибели микроорганизмов.
Стерилизация газами осуществляется в присутствии пара при температуре от 18 до 80 °С в специальных камерах. В больницах используют формальдегид, в промышленных условиях — оксид этилена и смесь ОБ.
Перед химической стерилизацией все изделия, подлежащие обработке, должны быть высушены.
Этот вид стерилизации небезопасен для персонала, для окружающей среды и для пациентов, пользующихся простерилизованными предметами (большинство стерилизующих агентов остается на предметах).
Однако существуют объекты, которые могут быть повреждены нагреванием, например, оптические приборы, радио- и электронная аппаратура, предметы из нетермостойких полимеров, питательные среды с белком и т. п., для которых пригодна только химическая стерилизация. Например, космические корабли и спутники, укомплектованные точной аппаратурой, для их деконтаминации обезвреживают газовой смесью (оксид этилена и бромистого метила).
В последнее время в связи с широким распространением в медицинской практике изделий из термолабильных материалов, снабженных оптическими устройствами, например эндоскопов, стали применять обезвреживание с помощью химических растворов. После очистки и дезинфекции прибор помещают на определенное время (от 45 до 60 мин) в стерилизующий раствор, затем прибор должен быть отмыт стерильной водой. Для стерилизации и отмывки используют стерильные емкости с крышками. Простерилизованное и отмытое от стерилизующего раствора изделие высушивают стерильными салфетками и помещают в стерильную емкость. Все манипуляции проводят в асептических условиях и в стерильных перчатках. Хранят эти изделия не более 3 суток.
Лучевая стерилизация осуществляется либо с помощью гамма-излучения, либо с помощью ускоренных электронов.
Лучевая стерилизация является альтернативой газовой стерилизации в промышленных условиях, и применяют ее также в тех случаях, когда стерилизуемые предметы не выдерживают высокой температуры. Лучевая стерилизация позволяет обрабатывать сразу большое количество предметов (например, одноразовых шприцев, систем для переливания крови). Благодаря возможности широкомасштабной стерилизации, применение этого метода вполне оправданно, несмотря на его экологическую опасность и неэкономичность.
Еще одним способом стерилизации является фильтрование. Фильтрование с помощью различных фильтров (керамических, асбестовых, стеклянных), а в особенности мембранных ультрафильтров из коллоидных растворов нитроцеллюкозы или других веществ позволяет освободить жидкости (сыворотку крови, лекарства) от бактерий, грибов, простейших и даже вирусов. Для ускорения процесса фильтрации обычно создают повышенное давление в емкости с фильтруемой жидкостью или пониженное давление в емкости с фильтратом.
В настоящее время все более широкое применение находят современные методы стерилизации, созданные на основе новых технологий, с использованием плазмы, озона.
studfiles.net
Стерилизация. Методы и режимы стерилизации. Контроль качества стерилизации.
Стерилизация это метод, обеспечивающий ликвидацию в стерилизуемом материале как вегетативных, так и споровых форм патогенных, условно-патогенных и непатогенных микроорганизмов. Применяют термическую лучевую и химическую стерилизацию. Кипячение не относится к методам стерилизации.
Термическая стерилизация. Осуществляется с сухим паром в автоклаве от 100 до 140 градусов цельсия или сухим жаром в сухожаровом шкафу 160-200 градусов цельсия. Автоклавирование применяют для стерилизации белья, резиновых изделий, синтетических предметов замкнутых ампул и другое.
Стерилизация ионизирующим излучением. Подвергаются лекарственные вещества, перевязочный материал шприцы, иглы, шовный материал, перчатки, системы для внутривенного введения.
Химическая стерилизация. Наиболее широко используется окись этилена. Через 1 час погибает стрептококк кишечная палочка, синегнойная палочка. Через 4 -7 часов стафилококк.
Находит применение стерилизации надуксусной кислотой, 6% перекись водорода и другое.
Контроль стерильности.
Физический. Контроль за температурой стерилизационной камеры с помощью термометра, использование веществ, имеющих определенную температуру плавления (плавкие индикаторы). недостаток — мы не можем быть уверены, что температура поддерживалась на протяжении всего времени экспозиции. надежность контроля стерилизации может быть повышена путем использования термовременных индикаторов.
Химический. Использование различных химических процессов, протекающих при определенной температуре, например фильтровальная бумага, смоченной в растворах крахмала люголя, приобретает темно бурый цвет запятая при экспозиции в автоклаве при температуре свыше 120 градусов цельсия крахмал разрушается, бумажка обесцвечивается. Недостаток метода аналогичен недостатку физического метода стерилизации.
Биологический. Посев со стерильного материала на питательные среды. нет роста колоний — материал стерильный, если — необходимо повторная стерилизации.
Централизованное стерилизационное отделение: структура, особенности работы. Упаковочный материал для стерилизации. Упаковка изделий медицинского назначения для стерилизации.
Профилактикой ВИЧ- инфекции и вирусных гепатитов в медицинских организациях. СПИД — эпидемиологические и социальные аспекты. Показания для обследования на ВИЧ-инфекции, правила ведения учетной и отчетной документации. Аварийная аптечка.
25. Личная гигиена персонала лечебных учреждений. Правила мытья рук. Защитная одежда. Одевание стерильных перчаток, маски. Правила снятия перчаток, маски.
Личная гигиена персонала лечебных учреждений
В любом медицинском учреждении личная гигиена медперсонала стоит на первом месте. Любой работник от санитара до доктора должен быть образцом чистоты.
В первую очередь правила личной гигиены медицинского персонала касаются рук. Даже уборка в помещении должна вестись в перчатках. Мыть руки нужно с щеткой. Нужно это для того чтобы очистить ногти и сделать кожу немного грубее. Если кожа стала сухая, то ещё нужно питать, смазывая кремом (на ночь).
Волосы должны быть чистые, аккуратно причёсаны без использования лака и другой «химии». Всякий мед. работник должен соблюдать гигиену полости рта.
Одежда должна состоять из халата, головного убора и сменной мягкой обуви.
Правила мытья рук
•Смочите руки теплой проточной водой и нанесите мыло.
•Энергично трите руки 15-20 секунд.
•Трите все поверхности, используйте специальную щетку.
•Хорошо промойте руки проточной водой.
•Вытрите руки чистым или одноразовым полотенцем.
•Используйте салфетку, чтобы выключить кран.
Дезинфицирующее средство на спиртовой основе, которое не требует воды, — превосходная альтернатива мытью рук. Такое средство более эффективно уничтожает бактерии и вирусы, чем мыло с водой, также способствует уменьшению сухости кожи и смягчению раздражений, чем мытье рук обычным способом.
•Нанесите примерно ½ чайной ложки продукта на ладони.
•Трите руки, покрывая все поверхности, пока они не высохнут.
•Однако если ваши руки слишком грязные, вымойте их водой с мылом, если это доступно.
Всегда мойте руки!
Порядок выполнения одевания защитной одежды:
1. обработанными руками из бикса взять свернутый халат,
2. развернуть его на вытянутых руках, не касаясь соседних предметов и своей одежды,
3. вдеть обе руки в рукава халата и накинуть его на себя спереди,
4. помощник должен подтянуть халат сзади за края и завязать тесемки,
5. самому завязать тесемки на рукавах,
6. достать из кармана пояс на вытянутых руках, помощник тем временем взяв его за концы завязывает их сзади,
7. развернуть маску, держа за середины верхних тесемок, за свободные концы помощник тем временем их должен завязать на затылке,
8. из бикса достать перчатки, развернуть и надеть. их манжетки должны прикрывать рукава халата,
9. руки в стерильных перчатках держать согнутыми в логтевых суставах, приподнятыми вверх на уровне выше пояса
10. в позе ожидания перчатки на руках обернуть стерильной марлевой салфеткой для защиты их от воздушно-капельной инфекции.
infopedia.su
Оценка стерилизации — Медицинский справочник
05.10.2011 09:34
Санитарно-эпидемиологический режим
Все стерилизуемые изделия должны проходить качественную оценку стерилизации.
Качество проведенной стерилизации определяют следующими способами:
— физическим;
— химическим;
— биологическим.
Физический способ — для контроля условий стерилизации сухожаровые шкафы и автоклавы оборудуют термометрами, манометрами, таймерами, световыми индикаторами.
Однако для определения качества стерильности этого недостаточно. Для контроля стерильности вместе с инструментами или мягким материалом закладывают пробирку или ампулу с веществом, которое плавится при температуре 120 °С (сера, бензойная кислота). Недостаток способа заключается в том, что неизвестно, в течение какого времени держалась эта температура.
Химический способ — для контроля качества применяют химические индикаторы (ленты, бумажные полоски, гранулы химикатов), которые меняют цвет или агрегатное состояние при определенных условиях (температура и давление). Изменение цвета или агрегатного состояния говорит о том, что необходимые условия стерилизации достигнуты.
Если изменение окраски неравномерное или агрегатное состояние не изменилось, значит, условия стерилизации не соблюдены, следует проверить, не перегружены ли камеры стерилизуемым материалом. Недостаток метода в том, что неизвестно, в течение какого времени держалась заданная температура.
Биологический способ — проводят бактериологическое исследование простерилизованного материала. Недостаток метода в том, что результат становится известным только через 48 ч. Сюда же относят индикаторы в виде бумажного пакета со спорами бактерий или полоску со спорами и капсулу с питательной средой, заключенные в пластиковый флакон. Такое тестирование проводится сотрудниками санэпидслужб.
В настоящее время используется термовременная лента ВИНАР. В упаковки с инструментами и мягким материалом закладывают на различную глубину отрезки ленты, которая изменяет свой цвет от светло-желтого до темно-коричневого при точном соблюдении определенных параметров температуры и времени. Термовременные индикаторы удобны в применении и достоверны.
Манипуляции, связанные с дезинфекцией, предстериализационной очисткой и стериализацией изделий медицинского назначения
Пользование автоклавом
Приготовьте:
— автоклав;
— заправленные биксы;
— индикаторы стерильности.
Технология.
1. Биксы с открытыми отверстиями и заложенными индикаторами стерильности поместить во внутреннюю камеру автоклава.
2. Разложить в автоклаве индикаторы стерильности.
3. Герметично закрыть крышку автоклава.
4. Налить в воронку автоклава воду до отметки на водомерном стекле.
5. Установить предохранительный клапан на нужную отметку (давление, при котором будет проходить стерилизация).
6. Открыть кран для отведения воздуха и пара.
7. Включить автоклав в электросеть.
8. При давлении в 1 атмосферу кран следует вновь открыть и выпустить остаток воздуха с паром.
9. Закрыть кран повторно и довести давление до определенного уровня.
10. Начать отсчет времени.
11. По истечении заданного времени необходимо выключить подогрев и выпустить пар через выпускной кран.
12. После снижения давления нужно до конца открутить винты и открыть крышку автоклава.
13. Надеть специальные рукавицы.
14. Вынуть биксы и разместить их на специальных стеллажах.
15. Отверстия в биксах закрыть.
16. Налить воду из автоклава, открыв выпускной кран для воды.
17. На этикетках биксов сделать отметку о дате и времени стерилизации, поставить подпись.
18. Держать автоклав открытым до его просушивания.
Пользование сухожаровым шкафом
Приготовьте:
— сухожаровой шкаф;
— подготовленные инструменты;
— индикаторы стерильности.
Технология.
1. Собрать необходимые наборы хирургических инструментов, которые уже прошли предстерилизационную обработку.
2. Уложить их в специальные металлические сетки таким образом, чтобы часть отверстий оставалась открытой для циркуляции горячего воздуха.
3. Разместить индикаторы стерильности по углам сетки и в центре.
4. Закрыть шкаф и включить рубильник.
5. Прогреть камеру в течение 5—10 мин.
6. Открыть крышку, загрузить сетки с хирургическими инструментами.
7. Закрыть шкаф.
8. Установить ручку реле времени на определенное время.
9. По истечении установленного срока выключить рубильник.
10. Надеть стерильную одежду, перчатки.
11. Через 5—10 мин после окончания стерилизации достать сетку с инструментами и перенести их на заранее подготовленный стерильный стол.
12. Разложить инструменты в 3 ряда.
13. Стол накрыть стерильной простыней в 4 слоя.
Похожие статьи:
Следующие статьи:
Предыдущие статьи:
www.medspravoch.ru
Контроль качества стерилизации
Контроль позволяет улучшить качество стерилизации в ЛПУ. Он предусматривает определение эффективности и параметров стерилизации.
Надежность воздушной стерилизациизависит от конструкции стерилизатора, его исправности, схемы и объема загрузки, используемой защитной упаковки, применяемых методов оперативного и периодического контроля, подготовки персонала, обсуживающего стерилизатор.
Проблема надежности особенно актуальна при эксплуатации аппаратов устаревших типов, при отсутствии доступных методов контроля стерилизации.
Контроль эффективности стерилизации в воздушном стерилизаторе осуществляется бактериологическим методом и химическими термовременными индикаторами.
Бактериологический метод контроля проводят с помощью биотеста — объекта из определенного материала, обсемененного тест-микроорганизмами. В качестве носителей используют небольшой флакон, содержащий споры B.Licheniformis. Контроль проводят в соответствии с утвержденной методикой. Существуют и готовые сертифицированные тесты со спорами B.Licheniformis с цветными питательными средами, позволяющими провести бактериологический контроль непосредственно в ЦСО при наличии в нем термостата.
Контроль воздушной стерилизации химическими термовременными индикаторами. Для оперативного контроля ранее рекомендовали многочисленные химические вещества, точка плавления которых соответствует температуре стерилизации. Но на сегодняшний день всем ясно, что они не могут считаться надежными индикаторами, поскольку не дают представления о времени воздействия горячего воздуха на изделие. Такой контроль носит ориентировочный характер и не гарантирует достижения стерильности в процессе стерилизации.
Надежность оперативного контроля существенно повышается при использовании индикаторов интегрированного действия, в частности, НП фирмы «Винар» ИС-160 и ИС-180, изменяющая окраску до цвета эталона только при воздействии на них температуры стерилизации в течение всей стерилизационной выдержки. Полоски индикатора закладываются в контрольные точки стерилизатора при каждом цикле стерилизации. Если окраска индикатора после стерилизации в какой-либо точке светлее эталона, все изделия считаются нестерильными.
Пакеты из пергаментной бумаги, используемые для упаковки, при стерилизации в современной стерилизующей аппаратуре имеют подобный индикатор, нанесенный в фабричных условиях.
Надежность паровой стерилизации зависит от нескольких факторов:
- соблюдения условий эксплуатации;
- точности контрольно-измерительных приборов, установленных на стерилизаторе;
- полноты удаления воздуха из стерилизуемых изделий;
- герметичности камеры стерилизатора.
Методы периодического контроля паровых стерилизаторов изложены в системе «чистый инструмент». Они включают:
- проверку точности манометра;
- проверку точности регистрации самописцами температуры и давления;
- контроль герметичности камеры стерилизатора;
- контроль качества автоматического вакуум-теста;
- контроль эффективности сушки текстильных материалов;
- проверку полноты удаления воздуха из стерилизуемых изделий. Определение эффективности бактериологическим методом в паровом стерилизаторе осуществляется тестами, содержащими споры B.Stearothermophilus в соответствии с методикой, утвержденной МЗ РФ.
Оперативный контроль паровой стерилизации проводят химическими индикаторами интегрированного действия (термо-временными).
Индикаторы плавления (тиомочевина, бензойная кислота и др.), которые все еще используются в некоторых ЛПУ, не являются индикаторами стерильности, поскольку регистрируют только температуру, но не учитывают стерилизационную выдержку (время стерилизации). Индикаторы фирмы «Винар» ИС-120 и ИС-132, также, как и в воздушном стерилизаторе, изменяют окраску до учета эталона только при воздействии на них температуры стерилизации в течение всей стерилизационной выдержки.
При каждом цикле полоски индикатора закладываются в контрольные точки стерилизатора. Если окраска индикатора в какой-нибудь точке светлее эталона, все изделия считаются нестерильными.
healthworker.ru
Контроль качества стерилизации
Контроль эффективности стерилизации осуществляется физическими, химическими и бактериологическими методами.
1. Физический: измерение температуры, давления и времени применения стерилизации.
2. Химический.Для проведения химического контроля на протяжении десятилетий применялись химические вещества, имеющие температуру плавления, близкую к температуре стерилизации. Такими веществами были: бензойная кислота — для паровой стерилизации; сахароза, гидрохинон и некоторые другие — для контроля воздушной стерилизации. Если происходило расплавление и изменение цвета указанных веществ, то результат стерилизации признавался удовлетворительным.
Берется пробирка, туда насыпается какое-либо вещество, плавящееся при температуре примерно 1200С. Например, серобензойная кислота. Недостаток: мы видим, что порошок расплавился и значит необходимая температура была достигнута, но мы не можем быть уверены, что она была такой на протяжении всего времени экспозиции.
Но на сегодняшний день всем ясно, что они не могут считаться надежными индикаторами, поскольку не дают представления о времени воздействия горячего воздуха на изделие. Такой контроль носит ориентировочный характер и не гарантирует достижения стерильности в процессе стерилизации.
Поскольку применение вышеуказанных индикаторов является недостаточно достоверным, в настоящее время внедрены в практику контроля термических методов стерилизации химические индикаторы, цвет которых изменяется под воздействием температуры, адекватной для конкретного режима, для определенного времени, необходимого для реализации данного режима. По изменению окраски индикаторов судят об основных параметрах стерилизации — температуре и продолжительности стерилизации. С 2002 года в России введен в действие ГОСТ РИСО 11140-1 «Стерилизация медицинской продукции. Химические индикаторы. Общие требования», в котором химические индикаторы распределены на шесть классов:
К 1 классу отнесены индикаторы внешнего и внутреннего процесса, которые размещаются на наружной поверхности упаковки с медицинскими изделиями или внутри наборов инструментов и операционного белья. Изменение цвета индикатора указывает на то, что упаковка подверглась процессу стерилизации.
Ко 2 классу относят индикаторы, которые не контролируют параметры стерилизации, а предназначенные для применения в специальных тестах, например, на основании таких индикаторов оценивают эффективность работы вакуумного насоса и наличие воздуха в камере парового стерилизатора.
К 3 классу относятся индикаторы, при помощи которых определяется один параметр стерилизации, например, минимальная температура. Однако они не дают информации о времени воздействия температуры.
К 4 классу относят многопараметровые индикаторы, изменяющие цвет при воздействии нескольких параметров стерилизации. Примером таких индикаторов являются индикаторы паровой и воздушной стерилизации одноразового применения ИКПВС-«Медтест».
К 5 классу относят интегрирующие индикаторы, реагирующие на все критические параметры метода стерилизации.
К 6 классу относят индикаторы-эмуляторы. Индикаторы откалиброваны по параметрам режимов стерилизации, при которых они применяются. Эти индикаторы реагируют на все критические параметры метода стерилизации. Эмулирующие индикаторы являются наиболее современными. Они четко регистрируют качество стерилизации при правильном соотношении всех параметров — температуры, насыщенного пара, времени. При несоблюдении одного из критических параметров индикатр не срабатывает. Среди отечественных термовременных индикаторов используются индикаторы «ИС-120», «ИС-132», «ИС-160», «ИС-180» фирмы «Винар» или индикаторы паровой («ИКПС-120/45», «ИКПС-132/20») и воздушной («ИКПВС-180/60» и «ИКВС-160/150») стерилизации одноразового применения ИКВС фирмы «Медтест».
Основные правила использования индикаторов паровой и воздушной стерилизации одноразового применения ИКПВС — «Медтест».
Все операции с индикаторами — выемка, оценка результатов — осуществляются персоналом, проводящим стерилизацию.
Оценку и учет результатов контроля проводят, оценивая изменения цвета начального состояния термоиндикаторной метки каждого индикатора, сравнивая с цветовой меткой Эталона сравнения.
Если цвет конечного состояния термоиндикаторной метки всех индикаторов соответствует цветовой метке Эталона сравнения, это свидетельствует о соблюдении требуемых значений параметров режимов стерилизации в стерилизационной камере.
Допускаются различия в интенсивности глубины окраски термоиндикаторной метки индикаторов, обусловленные неравномерностью допустимых значений температуры в различных зонах стерилизационной камеры. Если термоиндикаторная метка хотя бы одного индикатора полностью или частично сохранила цвет, легко отличимый от цвета эталонного состояния, это свидетельствует о несоблюдении требуемых значений параметров режимов стерилизации в стерилизационной камере.
Индикаторы и Эталоны сравнения должны совпадать по номерам партий. Запрещается оценивать результаты контроля стерилизации, используя индикаторы разных партий.
Оценку соответствия изменения цвета термоиндикаторной метки в сравнении с Эталоном проводят при освещенности не менее 215 лк, что соответствует матовой лампе накаливания 40 Вт, с расстояния не более 25 см.
Бактериологический.
Самый надежный метод. Берут образцы стерильного материала и сеют на питательные среды. Если микроорганизмы не обнаруживаются, то стерилизация прошла успешно, если микроорганизмы обнаруживаются, то стерилизация проводится повторно. Недостаток: ответ получают только спустя 48 часов и материал в биксе считается стерильным. Значит, материал используют еще до получения ответа из бактериологической лаборатории.
Для проведения бактериологического контроля в настоящее время применяются биотесты, имеющие дозированное количество спор тест-культуры. Существующая методика позволяет оценивать эффективность стерилизации не ранее чем через 48 часов, что не позволяет применять уже простерилизованные изделия до получения результатов бактериологического контроля.
Биологический индикатор представляет собой препарат из патогенных споро-образующих микроорганизмов с известной высокой устойчивостью к данному типу стерилизационного процесса. Задачей биологических индикаторов является подтверждение способности стерилизационного процесса убивать устойчивые микробные споры. Это наиболее критичный и достоверный тест стерилизационного процесса. Применяются биологические индикаторы в качестве контроля загрузки: если результат положительный (микробный рост), то использовать данную загрузку нельзя и необходимо отозвать все предыдущие загрузки до последнего отрицательного результата. При использовании биологических индикаторов возникают определенные трудности — необходимость наличия микробиологической лаборатории, обученного персонала, продолжительность инкубации многократно превышает длительность стерилизации, необходимость карантина (невозможность использования) простерилизованных изделий до получения результатов.
Контроль позволяет улучшить качество стерилизации в ЛПО. Любые предметы, применяемые при лечении и уходе за пациентами, если они не будут полностью обеззаражены, могут привести к инфицированию других людей. Использование недостаточно простерилизованного инструментария может вызвать развитие сывороточного гепатита, инфицирование ВИЧ, стафилококковой и другими инфекциями.
Контрольные вопросы
1. Виды и методы стерилизации.
2. Структура ЦСО.
3. Виды упаковочного материала для стерилизации.
4. Срок хранения стерильного изделия.
5. Контроль качества стерилизации.
Список использованной литературы:
- Обуховец Т.П. ОСД. Практикум, «Феникс», 2013, с. 99-15
Электронная библиотека колледжа:
- Островская И.В. Широкова Н.В. «Основы Сестринского дела» 2008;
- Мухина С.А., Тарновская И.И. «Теоретические основы сестринского дела» 2010
4. Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы СанПиН 2.1.3.2630 – 10.
Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском гугл на сайте:
zdamsam.ru